Том 3. Справочник по кожным болезням - часть 390

Количественное   определение   реагинов   имеет   значение   при   оценке

эффективности противосифилитического лечения. Быстрое снижение титра реагинов
свидетельствует об успешности терапии. Длительно не снижающийся титр реагинов
указывает на отсутствие эффективности терапии и необходимости ее изменения.

В   спинномозговой   жидкости  больного   сифилисом   могут   находиться

противотрепонемные антитела и реагины, способные вступать в реакцию связывания
комплемента с соответствующими антигенами.

Реакцию ставят с непрогретой спинномозговой жидкостью, ввиду отсутствия в ней

комплемента.

Мутную   или   с   примесью   крови   жидкость   центрифугируют   и   отсасывают

надосадочную жидкость.

Спинномозговую жидкость параллельно исследуют в трех дозах:
1) неразведенную; 2) разведенную изотоническим раствором натрия хлорида 1:2;

3) разведенную изотоническим раствором натрия хлорида 1:5 

Реакцию   производят   с   двумя   антигенами   параллельно   -   трепонемным   и

кардиолипиновым   -   с   каждым   разведением   спинномозговой   жидкости   по   схеме
(таблица N 7).

Ввиду   отсутствия   антикомплементарных   свойств   спинномозговой   жидкости   для

ее исследования комплемент в реакцию вводят по титру (первая растворяющая доза
без   обычной   надбавки).   Для   повышения   качества   ликвородиагностики   сифилиса
реакцию   связывания   комплемента   рекомендуется   заменять   РИФ-ц   или   новой
модификацией РИТ, методика постановки которой изложена ниже.

Результаты   реакции   учитывают   отдельно   для   каждой   антигена   и   разведения

спинномозговой   жидкости.   Для   обозначения   позитивности   реакции   Вассермана   со
спинномозговой жидкостью пользуются системой четырех плюсов, описанной выше.

Источники ошибок.
Нарушение   условий   и  методики   постановки   реакции.  Несоблюдение  условий   и

срока   хранения   спинномозговой   жидкости,   антигенов,   комплемента,   эритроцитов
барана. Изменение процентного содержания натрия хлорида. Неправильно выбранная
рабочая доза комплемента (избыток или недостаток его в опыте).

Использование   при   постановке   реакции   загрязненных   пробирок,   пипеток,

химических стаканов, мерных цилиндров.

РЕАКЦИЯ ИММОБИЛИЗАЦИИ БЛЕДНЫХ ТРЕПОНЕМ

Принцип.   Реакция   основана   на   феномене   потери   бледными   трепонемами

подвижности   в   присутствии   иммобилизирующих   противотрепонемных   антител
исследуемой сыворотки крови и комплемента в условиях анаэробиоза. 

Постановке реакции предшествует подготовительная работа.
Обработка лабораторной посуды. Вся лабораторная посуда (пипетки, пробирки,

флаконы,  и  т.   п.),  используемая  для   постановки   реакции   иммобилизации   трепонем,
должна   быть  стерильной.   Перед   стерилизацией   ее   моют  без   применения
дезинфицирующих средств. Для этого после опыта пробирки и флаконы погружают в
мыльную   воду   комнатной   температуры,   кипятят   в   течение   40   минут,   охлаждают   до
40град. и моют водопроводной сначала теплой, а затем холодной водой, наливая ее в
каждую   пробирку   5-7   раз,   после   чего   1   раз   промывают   дистиллированной   водой   и
высушивают   в   сушильном   шкафу.   Высушенную   посуду   завертывают   в   бумагу   и
стерилизуют автоклавированием в течение 30 минут при 2 атмосферах по манометру.
После стерилизации посуду вновь высушивают в сушильном шкафу и хранят в боксе в
течение 7 дней.

Перед   взятием   крови   на   РИБТ  обследуемый   не   должен   получать

медикаменты,  особенно   препараты   пенициллина.   Прием   препаратов   отменяют   на
срок их возможной задержки в организме. После отмены бициллина кровь берут через

1   месяц.   При   использовании   пенициллиназы   при   постановке   реакции   прекращение
введения препаратов пенициллина не обязательно.

Кровь   для   реакции   берут   из   локтевой   вены   натощак   стерильно,   в   сухую,

химически   чистую   и   стерильную   пробирку.   Кожу   локтевого   сгиба   перед   проколом
протирают 70 % спиртом. 

В реакции можно исследовать сыворотки крови, высушенные на вощаной бумаге,

с добавлением по 3 капли на каждые 0,5 мл сыворотки крови свежеприготовленного
40% раствора пищевого сахара. Такие сыворотки крови должны быть исследованы не
позднее 5 дней после высушивания в южных районах страны, а также в летнее время
года,   не  позднее  10 дней  на  остальных  территориях  страны.   Следует  помнить,  что
результаты   исследования   сыворотки   крови   с   невысоким   содержанием   антител
негативируются   быстрее,   поэтому   не   следует   широко   применять   высушенные
сыворотки крови. Для растворения к высушенным сывороткам крови, помещенным в
пробирку, добавляют 0,9% изотонический раствор натрия хлорида, восстанавливая их
первоначальный объем, после растворения стерилизуют кварцеванием в течение 30
минут, расположив пробирки на расстоянии 0,5 метра от кварцевой лампы.

Период от момента постановки реакции до регистрации ее результатов длится

18-20   часов,   поэтому   для   сохранения   жизнеспособности   и   хорошей   подвижности
микроорганизмов необходима среда выживания. Рекомендуется среда N 2 ЦКВИ. 

В   реакции   иммобилизации   используют   избыток   комплемента.   В   реакции

применяют   комплемент   морской   свинки.   Количество   его   в   значительной   степени
зависит от среды выживания для бледных трепонем. 

В качестве антигена в реакции применяют взвесь бледных трепонем из раннего

орхита кролика (7-9 суток после заражения). Используют бледные трепонемы штамма
Никольса,   которые   еженедельно   пассируют   на   кроликах.   Зараженных   кроликов
содержат   в   светлых   проветриваемых   помещениях.   Кормят   полноценной   пищей,
содержащей   витамины   (морковь   -   обязательно).   Для   заражения   следует   брать
здоровых   кроликов   -   самцов   весом   2,5-3   кг   с   отрицательным   результатом
серологических   реакций   на   сифилис   (КСР   и   РИТ).   За   1-2   суток   до   заражения   у
кроликов выстригают шерсть в нижней части живота, внутренней поверхности бедер и
мошонки. Для получения раннего специфического орхита кролика заражают введением
внутрь   каждого   яичка   по   1   мл   взвеси   бледных   трепонем.   Во   взвеси   должно
содержаться   более   50   микроорганизмов   в   каждом   поле   зрения   микроскопа   при
использовании окуляра 7 х и объектива 40.

Введение животным гидрокортизона для подавления иммуногенеза не является

строго обязательным. Применение его рекомендуется при уменьшении в яичках числа
бледных   трепонем   при   повторных   пассажах   (менее   50   при   исследовании   в   темном
поле зрения). Гидрокортизон вводят внутримышечно в дозе 20 мг перед заражением и
в последующие 4-6 дней - 10 мг.

О   появлении   орхита   свидетельствует   увеличение   размеров   яичка   и   его

уплотнение.   Для   удаления   яичек   кролика   привязывают   к   станку,   обескровливают
пункцией   сердца   под   эфирным   наркозом,   если   кролик   при   этом   не   погибает,   его
забивают воздушной эмболией - введением 20 мл воздуха в сердце или в вену уха. 

Постановку   реакции   проводят   в   боксе.   Каждую   сыворотку   исследуют   в   двух

пробирках: опытной и контрольной.

При   постановке   реакции   применяют   5   контрольных   исследований:   с   заведомо

положительной и отрицательной сыворотками крови, взятыми из предыдущего опыта,
с   активным   и   инактивированным   комплементом   и   средой   выживания   для   бледных
трепонем. Контрольную отрицательную сыворотку крови применяют для суждения о
степени подвижности бледных трепонем в данном опыте. Контрольную положительную
сыворотку   крови   -   для   оценки   степени   иммобилизирующей   активности   в   условиях
данного   опыта.   Сыворотки   крови   исследуют   по   вышеописанной   методике.
Исследование   активного   и   инактивированного   комплемента   и   среды   проводят   для
определения их влияния на подвижность бледных трепонем 

Оценку полученных результатов проводят через 18-20 часов. Пробирки вынимают

из   термостата   и   микроанаэростата   и   расставляют   в   штативе   попарно   (опытная   и
контрольная).   Из   каждой   пары   пробирок   пастеровской   пипеткой   наносят   капли
пронумерованные   соответственно   опытным   пробиркам   на   предметные   стекла,
накрывают покровными стеклами 20х20 мм и исследуют в микроскопе с конденсором
темного поля зрения с объективом 40, окуляром 10 х . Просматривают несколько полей
зрения   в   разных   участках   препарата,   подсчитывая   в   каждом   число   подвижных   и
неподвижных   бледных   трепонем.   Подсчет   начинают   с  препарата   из   контрольной,   а
затем из опытной пробирки.

В препарате подсчитывают не менее 25 трепонем и отмечают,  сколько из них

подвижных и сколько неподвижных.

Если в опытном препарате содержится 13-19 подвижных бледных трепонем, то

для   получения   более   достоверного   результата   необходимо   сосчитать   не   25,   а   50
микроорганизмов,   также   отмечая   среди   них   число   подвижных   и   неподвижных.   При
подсчете 50 бледных трепонем полученное число подвижных микроорганизмов делят
на 2.

Если в контрольном препарате содержится меньше 17 подвижных трепонем из 25

подсчитанных,   то   такой   опыт   не   пригоден   и   исследование   данной   сыворотки   крови
следует   повторить.   В   контрольных   пробирках   с   инактивированным   комплементом
отсутствие   подвижных   трепонем   объясняется   токсичностью   исследуемой   сыворотки
крови,   чаще   всего   вследствие   примеси   медикаментов,   иногда   бактериальным
загрязнением.

При определении подвижности бледных трепонем следует обращать внимание

на интенсивность движений, совершаемых бледной трепонемой. У бледной трепонемы
не всегда можно наблюдать сгибательные и контрактильные движения и иногда только
вращательные.   Следует   также   уметь   отличать   активные   движения   трепонем   от
движения с током жидкости.

Расчет процента специфической иммобилизации бледных трепонем производят

по следующей формуле:

                          A - В
                      Х = ------ x 100, где
                            А
    А - число подвижных бледных трепонем в контрольной пробирке;
    В - число подвижных бледных трепонем в опытной пробирке;
    Х - процент иммобилизации.

    Пример:       24 - 21
             Х = -------- х 100 = 12%
                    24

В   практической   работе   процент   иммобилизации   определяют   по   заранее

составленной таблице (N 11) с применением вышеуказанной формулы. 

Реакция   иммобилизации   считается

 отрицательной,   когда   процент

иммобилизации   колеблется   в   пределах   0-20,   сомнительной   от   21   до   30,
слабоположительной   от   31   до   50   и  положительной   выше   50.   Сыворотки   крови   с
сомнительными   и   слабоположительными   результатами   реакции   нуждаются   в
повторном   исследовании   для   получения   более   достоверных   результатов.
Целесообразно   также   подвергать   повторному   исследованию   все   сыворотки   крови,
давшие полное расхождение результатов с результатами стандартных серологических
реакций. Эти сыворотки крови заслуживают особого внимания, так как в этих случаях
результаты  реакции  иммобилизации  бледных  трепонем   дают  возможность  судить  о
наличии или отсутствии сифилиса у обследуемого лица.

Определение остаточного комплемента. Определение остаточного комплемента

необходимо   для   суждения   о   том,   достаточным   ли   было   количество   комплемента   в

опытных   пробирках,   не   была   ли   подвижность   бледных   трепонем   обусловлена
отсутствием   комплемента,   вследствие   чего   иммобилизины   не   могли   проявить   свою
активность.

После   регистрации   результатов   реакции   иммобилизации   бледных   трепонем   в

содержимом   пробирок   определяют   остаточный   комплемент   добавлением   в   каждую
пробирку гемолитической системы в объеме 0,1 мл. Пробирки помещают в термостат
при   37   град.   С   на   45   минут.   В   опытных   пробирках   должен   наступить   гемолиз
эритроцитов, в контрольных должна быть задержка гемолиза. Отсутствие в опытных
пробирках   гемолиза   указывает   на   недостаточное   количество   комплемента,   в   этих
случаях исследование надо повторить . Повторное исследование сыворотки крови не
производят   только   в   том   случае,   если   отмечена   100%   иммобилизация   бледных
трепонем.

    Источники ошибок:
    - токсичность исследуемой сыворотки крови;
    - бактериальное загрязнение исследуемой сыворотки крови
      комплемента, среды;
    - недостаточное количество комплемента в опыте;
    - нарушение  герметичности  микроанаэростата,  проникновение в
      него кислорода из атмосферного воздуха;
    - повышение  или  понижение температуры в термостате в течение
      реакции;
    - кислотность     или    щелочность    лабораторной    посуды,
      использованной при постановке реакции.

МЕЛАНЖЕРНАЯ МЕТОДИКА ПОСТАНОВКИ РИТ ПО Н. М. ОВЧИННИКОВУ

Анаэробные   условия   при   постановке   реакции   создаются   помещением

реагирующей   смеси   в   меланжер   (лейкоцитарный   смеситель),   оба   конца   которого
закрыты резиновым кольцом. Меланжерная методика реакции позволяет обходиться
без вакуумного насоса, баллона со смесью азота, углекислого газа, микроанаэростата.
При   сравнительном   изучении   на   большом   клиническом   материале   получены
результаты, не уступающие классической анаэростатной методике.

КОЛИЧЕСТВЕННАЯ МЕТОДИКА ПОСТАНОВКИ РИТ.
Клиническая   оценка   огромного   числа   исследований   крови   в   РИТ   наряду   с

высокой специфичностью показала ее более низкую чувствительность по сравнению с
другими тестами при ранних и поздних формах сифилиса, что обусловлено меньшей
активностью   выработки   иммобилизинов   в   указанные   периоды   заболевания,   хотя
данные антитела в крови и ликворе остаются в наличии.

В   связи   с   этим   была   предложена   постановка   РИТ   с   общепринятым   и

увеличенным   в   2   и   4   раза   объемом   сыворотки   крови,   то   есть   вместо   0,05   мл
испытуемой сыворотки крови в реакцию вводится 0,05; 0,1 и 0,2 мл сыворотки. Помимо
этого методика постановки РИТ остается аналогичной классической. Доказано, что при
использовании такой модификации с диагностической целью следует ориентироваться
на процент иммобилизации  бледных трепонем  с 0,2 мл сыворотки  крови.  При этом
чувствительность   РИТ   значительно   повышается   при   сохранении   высокой
специфичности теста.
МЕТОДИКА ПОСТАНОВКИ РЕАКЦИИ ИММОБИЛИЗАЦИИ БЛЕДНЫХ ТРЕПОНЕМ ДЛЯ
ЛИКВОРОДИАГНОСТИКИ СИФИЛИСА

При   исследовании   крови   в   общепринятой   РИТ,   в   реакцию   вводят   0,05   мл

исследуемой   сыворотки   крови,   0,15   мл   комплемента   и   0,35   мл   антигена.   Для
приготовления антигена взвесь бледных трепонем разводят в среде выживания так,
чтобы в поле зрения было 10-15 микроорганизмов. Однако такая техника постановки
реакции при исследовании ликвора не обеспечивает высокой чувствительности теста.

По новой методике при исследовании ликвора в РИТ его объем увеличивают в 4

раза, т.е. в реакцию вводят 0,2 мл. Объемы комплемента (0,15 мл) и антигена (0,35 мл)
не меняются, лишь при изготовлении антигена взвесь бледных трепонем разводят в
среде выживания до 20-25 микроорганизмов в поле зрения.

После   пункции   ликвор   помещают   в   сухую,   химически   чистую   и   стерильную

пробирку.   Мутный   или   с   примесью   крови   ликвор   центрифугируют   и   отсасывают
надосадочную жидкость.  В реакцию ликвор вводят цельным и неинактивированным.
Перед   исследованием   ликвор   можно   сохранять   в   морозильном   отделении
холодильника   при   температуре   от   -12   град.   С   до   -18   град.   С   в   пробирках   под
резиновыми   пробками   до   1   месяца.   Размораживание   производят   при   комнатной
температуре. Повторное замораживание и размораживание не допускается.

В остальном методика постановки РИТ с увеличенным объемом ликвора и учет

результатов   аналогичны   общепринятой   РИТ.   Диагностическая   эффективность
вышеописанной методики близка к РИФ-ц.

МЕРОПРИЯТИЯ В СЛУЧАЕ АВАРИИ В СЕРОЛОГИЧЕСКОЙ ЛАБОРАТОРИИ

При   аварии   во   время   работы   с   инфекционным   материалом   (бой   посуды,

разбрызгивание из шприца при заражении животных, а также во всех случаях, ведущих
к   загрязнению   заразным   материалом   окружающих   предметов,   одежды   открытых
частей   тела   работников)   присутствующий   при   этом   персонал   обязан   немедленно
прекратить работу, известить о случившемся заведующего лабораторией и провести
обеззараживание   помещения,   оборудования   и   предметов,   которые   могли   быть
инфицированы, а также провести самообеззараживание.

Для   ликвидации   последствий   аварии   применяют   следующие   методы

обеззараживания:

- горизонтальную поверхность, на которую попал заразный материал, заливают

дезинфицирующим   раствором   (5%   раствором   хлорамина   или   5%   раствором
карболовой кислоты);

-   вертикальные   поверхности   (загрязненные   стены,   поверхность   мебели,

приборов)   протирают   ватными   или   марлевыми   тампонами,   обильно   смоченными
дезинфицирующим раствором;

- загрязненную одежду снимают и замачивает в дезинфицирующем растворе;
-   загрязненную   обувь   обмывают   тампонами,   смоченными   дезинфицирующим

раствором;

- открытые участки кожи лица, рук и других частей тела в случае загрязнения их

заразным материалом (взвесь бледных трепонем, сыворотка крови из инфекционного
отделения) обрабатывают 70% этиловым спиртом;

- при загрязнении слизистых оболочек рот прополаскивают 5% раствором соды

или   0,5%   раствором   соляной   кислоты,   глаза   промывают   водой   и   закапывают
свежеприготовленный 1% раствор азотнокислого серебра или 30% альбуцида, в нос
закапывают 1-2 капли 1% раствора протаргола. Проводят профилактическое лечение;

-   при   несчастном   случае,   связанном   с   ранением   или   укусом   зараженным

животным   или   другими   нарушениями   целостности   кожных   покровов,   необходимо
выдавить   из   ранки   кровь,   смазать   рану   5%   настойкой   йода   и   провести   курс
профилактического лечения. При оцарапывании кожи зараженным животным на место
ранения кладут на 5 минут компресс с 5% раствором лизола или делают ванночку из
того же раствора.

РАБОТА С ИНФЕКЦИОННЫМ МАТЕРИАЛОМ

Оперативные   вмешательства   на   зараженных   животных   и   заражение   должны

производиться   в   фартуке,   резиновых   перчатках   и   защитных   очках.   После   работы
фартук и перчатки обрабатывают дезинфицирующим раствором, перчатки кипятят в
течение 30 минут.

Тушки   убитых   животных,   больных   сифилисом,   необходимо   собирать   в

специальное   хранилище   с   последующим   сжиганием.   При   невозможности   сжигания,
тушки заливают 5% раствором хлорамина на сутки, а затем закапывают в землю вдали
от   жилых   помещений   на   достаточную   глубину   (0,7-1   метр),   не   допускающую
выкапывания их другими животными (крысами, собаками, кошками и т. п.).

В   процессе   работы   и   после   ее   окончания   применяют   следующие   способы

дезинфекции. Посуду, соприкасающуюся с бледными трепонемами или содержащую
кусочки зараженных тканей, погружают в мыльную воду комнатной температуры без
применения   дезинфицирующих   средств,   кипятят   в   течение   30   минут   в   указанном
растворе, охлаждают и моют водопроводной, сначала теплой, затем холодной водой, с
последующим прополаскиванием дистиллированной водой.

Просвет   верхнего   конца   пипетки,   с   помощью   которой   насасывают

инфицированный материал, должен быть плотно закрыт ватным тампоном.

Пипетки,   загрязненные   бледными   трепонемами,   помещают   в   3-5%   раствор

карболовой кислоты на 1 час, затем промывают 5-6 раз водопроводной водой и один
раз   -   дистиллированной.   Если   пипетки   при   этом   не   становятся   прозрачными,   их
погружают   в   раствор   хромовой   смеси   на   сутки,   после   чего   промывают   9   раз
водопроводной водой и один раз дистиллированной.

Поступившую на исследование кровь и полученную из нее сыворотку крови после

работы   сливают   в   канализационную   сеть,   предварительно   обработав
дезинфицирующим средством.

Посуду после использования промывают под проточной водой, затем замачивают

в   горячем   (50   град.   С)   моющем   растворе   на   30   минут,   полностью   погружая   ее   в
раствор   и   заполняя   полости.   Затем   посуду   моют   ершами   или   ватно   -   марлевыми
тампонами, в среднем 25-30 секунд один предмет. Вымытую посуду прополаскивают в
проточной воде, затем в дистиллированной и высушивают при температуре 180-200
град. С в течение 45 минут.

В качестве  моющего раствора  применяют  0,5% комплекс  перекиси  водорода  с

моющими средствами - "Новость", "Прогресс", "Сульфанол", "Лотос", "Астра" и др. (33%
раствор пергидроля - 20 мл + 975 мл воды + 5 г моющего средства).

Поверхность   рабочих   столов   в   конце   каждого   рабочего   дня,   а   также   при

загрязнении   их   кровью,   сывороткой   крови   обрабатывают   дезинфицирующим
раствором   (80   мл   96град.   спирта   +   20   мл   дистиллированной   воды   +   7   мл   33%
пергидроля, раствором сулемы 1:1000 и др.)

В   случае   загрязнения   рук   кровью   их   следует   вымыть   теплой   водой   с

хозяйственным   мылом,   насухо   вытереть   обработать   тампоном,   смоченным
антисептиком (6% раствором перекиси водорода, 0,1% раствором дезоксана или 70%
раствором этилового спирта).

Все   манипуляции,   при   которых   может   произойти   загрязнение   рук   кровью   и

сывороткой крови, следует проводить в резиновых перчатках.

При работе с кровью, сывороткой крови нужно пользоваться резиновой грушей.

Насасывание ртом не допускается.

При   работе   в   лабораториях,   осуществляющих   серо-   и   ликвородиагностику

сифилиса,   должны   выполняться   "Санитарные   правила"   СП   1.2.   731   -   99,   1.2.
Эпидемиология. Безопасность работы с микроорганизмами III - IV групп патогенности и
гельминтами". Минздрав России, Москва, 1999 г.

Эффективность использования метода:

В   ГУ   ЦНИКВИ   МЗ   РФ   на   большом   материале   изучена   результативность

приведенных в инструкции методов. При серодиагностике сифилиса МР - 95,8%, РСК с
трепонемным антигеном - 95,8%, с кардиолипиновым антигеном - 90,2%, РИТ - 87,7%,
РИФ   -   99,1%,   ИФА   -   99,1%,   РПГА   -   99,4%,   положительных   результатов   у   больных
сифилисом.

Наиболее  экономичной и простой является МР с кардиолипиновым  антигеном,

которую   широко   используют   как   отборочный   тест   на   сифилис.   Подобной
чувствительностью   обладает   и   КСР,   но   он   более   специфичен   в   связи   с
использованием трепонемного антигена.

Ввиду   того,   что   в   организме   больного   сифилисом   выработка   иммобилизинов

наступает   позже   других   специфических   антител   и   их   концентрация   в   крови
уменьшается при поздних формах сифилиса, РИТ более эффективно при вторичном и
скрытом   сифилисе.   Закономерно,   при   поздних   формах   сифилиса   выявляются
гемагглютинины   (РПТА),   флюорисцирующие   антитела   (РИФ,   ИФА),   как   правило
вырабатываются  в организме  больных сифилисом  при всех формах сифилиса. При
диагностике   сифилиса   нервной   системы   наиболее   эффективна   РИФ-ц   с   ликвором
(100% чувствительность и специфичность).

ВЫПИСКА из МЕТОДИЧЕСКИХ РЕКОМЕНДАЦИЙ

ГЛАВНОГО ВОЕННО-МЕДИЦИНСКОГО УПРАВЛЕНИЯ МО РФ

ДИАГНОСТИКА, ЛЕЧЕНИЕ И ПРОФИЛАКТИКА СИФИЛИСА 

В АРМИИ И НА ФЛОТЕ

Утверждено начальником Главного военно-медицинского управления 

Министерства обороны РФ

Москва 1999г.

В  мирное   время  методы  этиологической  лабораторной   диагностики  сифилиса

целесообразно  использовать начиная  с отдельного  медицинскою  батальона дивизии.
Здесь   вполне   возможно       использование       методов       микропреципитации.       В
гарнизонных   военных   госпиталях   могут   найти   применение   классическая   реакция
Вассермана,   РПГА  и   ИФА.   Центральным   и  окружным   военным   госпиталям   вполне
доступны   РИФ   и   РИТ.   В   военное   время,   учитывая   довольно   длительный
инкубационный   период   при   сифилисе,   уровень   внедрения   основных   методов
этиологической лабораторной диагностики сифилиса на этапах медицинской эвакуации
следует ограничить лабораторными подразделениями госпитальной базы.

Общественная профилактика сифилиса предусматривает:
1. Раннее выявление, эффективное лечение и строгий учет больных и источников

заражения;

2. Госпитализация больных с ранними манифестными и скрытыми формами

 

сифилиса в первые сутки после установления диагноза; недопущение амбулаторного 
лечения военнослужащих срочной службы (за исключением особых случаев);

3. Активное обследование членов семей больных и лиц, находившихся с ними в 

половых и тесных бытовых контактах;

4. Регулярное проведение профилактических осмотров молодого пополнения, 

прибывшего в часть; военнослужащих, возвратившихся из отпусков и командировок; 
лиц, работающих на объектах питания, водоснабжения, банно-прачечного 
обслуживания, в школах и детских дошкольных учреждениях, в гарнизонных 
парикмахерских; всего личного состава во время помывки в бане, а также работников 
учреждений, в которых могут создаваться благоприятные условия для внеполового 
заражения. Активное выявление больных сифилисом среди так называемых групп 
риска;

5. Обязательное обследование всех доноров с исследованием крови на 

серологические реакции;

6. Серологическое обследование на сифилис всех взрослых больных, 

находящихся на обследовании и лечении в стационарах различного профиля;

7. Профилактика врожденного сифилиса;
8. Лечение больных по единым для всей страны схемам, изложенным в 

методических рекомендациях по лечению и профилактике сифилиса и гонорее, 
утвержденных Министерством Здравоохранения РФ и приведенных в настоящей 
инструкции;

9.  Предупреждение распространения  инфекции  через ознакомление  больного  

со  статьями  33  и  34  «Основ законодательства Российской Федерации об охране 
здоровья граждан». Врач, установивший наличие заболевания, передаваемого половым 
путем, должен дать подписать больному "Предупреждение лицу, заболевшему 
венерической болезнью", предварительно ознакомив с правилами поведения, 
связанного с его заболеванием.

10. Наблюдение и контроль за аккуратностью лечения, вплоть до полного 

выздоровления, то есть до момента снятия больного учета. Своевременное клиническое
и лабораторное обследование больных, окончивших лечение.