Главная Учебники - Медицина Лабораторные методы исследования в клинике: справочник (Меньшиков В.В.) - 1987 год
поиск по сайту правообладателям
|
|
|
содержание .. 79 80 81 82 ..
В з я т и е м а т е р и а л а н а и с с л е д о - в а н и е . Раневое отделяемое берут стерильными ватными тампонами из глубины раны до обра- ботки ее антисептическими растворами. Там- поны срочно направляют в бактериологическую лабораторию. При наличии в ране дренажа отделяемое берут стерильным шприцем, из кото- рого оно переносится с соблюдением правил асептики в стерильную пробирку или анаэроб- ный флакон. Удаляемые при обработке раны кусочки тканей отправляют в лабораторию в стерильных чашках Петри. П р о в е д е н и е и с с л е д о в а н и я . По- сев раневого отделяемого непосредственно с тампона производят на питательные среды в сле- дующем порядке. 1. Кровяной агар (посев штрихом на ' / 2 чашки Петри). 2. Сахарный бульон. 3. Среда для анаэробов. Тампон оставляют в пробирке. Жидкие пробы засевают на плотную среду петлей. Предпочтительнее производить посев по 0,1 мл разведенной до 10-' и неразведенной про- бы, растирая материал по поверхности пита- тельной среды шпателем. В жидкие питательные среды посев производят пастеровской пипеткой. При посеве на анаэробы пипетку с исследуемым материалом опускают на дно пробирки, не до- пуская попадания пузырьков воздуха в среду. Кусочки тканей режут стерильными ножни- цами, взвешивают в стерильной чашке Петри и измельчают в стерильной ступке с питательным бульоном из расчета 1 мл бульона на 1 г ткани. Затем делают десятикратные разведения взвеси до 10- 3 (0,9 мл бульона и 0,1 мл взвеси=10-'; 0,9 мл бульона и 0,1 мл разведения 10-' = 10- 2 и т. д.). По 0,1 мл каждого разведения засевают на кровяной агар. Подсчет КОЕ/г ткани производят с учетом числа выросших колоний и сделанных разве- дений. Посевы инкубируют аэробно и анаэробно при 37 °С. Посевы просматривают ежедневно. При появлении роста на плотной среде изучают мор- фологию колоний. Дается количественная оцен- ка роста. В случаях выявления колоний разли- чной морфологии подсчитывают число колоний каждого вида микроорганизмов. При этом вы- являют ведущий вид в ассоциации. По 2—3 ко- лонии каждого типа отсевают на соответствую- щие питательные среды для дальнейшей иден- тификации. При появлении роста в жидких питательных средах готовят мазки (окраска по Граму), с са- харного бульона производят посевы на кровяной агар, среду Эндо, молочно-солевой агар. Отри- цательный результат исследования выдают че- рез 7 сут при отсутствии роста на всех пита- тельных средах. М и к р о с к о п и я м а з к о в р а н е в о г о о т д е л я е м о г о . Для приготовления мазков отделяемого ран следует использовать отдель- ные тампоны, которыми забирают патологиче- ский материал и переносят его на стекло. Мазки окрашивают по Граму. Если в лабораторию до- ставлен только один тампон, то мазок готовят после посева патологического материала. При микроскопии мазков отмечают морфологию и ко- личество микроорганизмов. Выделяемые при этом особенности могут внести коррекцию в ход исследования — использование добавочных пи- тательных сред. Исследование выпотов. Все выпоты, подозри- тельные на экссудат, следует направлять на микробиологическое исследование. Соблюдая правила асептики, пунктируют иглой полость и отсасывают содержимое с помощью шприца. Из шприца патологический материал переносят у пламени горелки в стерильный анаэробный фла- кон и отправляют в лабораторию. В лаборатории прозрачную жидкость цент- рифугируют 15—20 мин при 3000 об/мин и оса- док используют для посева и приготовления маз- ков. При гнойном характере проб готовят тонкие мазки для микроскопии без предварительного центрифугирования. Посев проб производят на кровяной агар, сахарный бульон, среду для анаэробов. Кроме того, используют специальные питательные среды в зависимости от особенно- стей источника выпота. Так, плевральный выпот чаще всего наблюдается у больных с туберку- лезом легких, поэтому после центрифугирова- ния осадок дополнительно засевают на среды для культивирования туберкулезной палочки или заражают патологическим материалом мор- скую свинку. При эмпиемах часто возбудителем может быть пневмококк, стрептококк группы А, золотистый стафилококк, Haemophilus i n f l u e n - zae, анаэробы. Следовательно, в набор пита- тельных сред должны быть включены сыворо- точные среды, шоколадный агар, среды для ана- эробов. При исследовании синовиальной жидко- сти следует использовать питательные среды для выделения гонококка. О ц е н к а р е з у л ь т а т о в . Интерпрета- ция полученных данных обычно не представляет трудностей, так как при условии соблюдения правил асептики во время взятия патологическо- го материала и из закрытых полостей, и из глу- бины гнойных ран (очаги инфекции) выделен- ные микроорганизмы являются возбудителями данного инфекционного процесса. При выделении ассоциаций микроорганиз- мов из раневого отделяемого ведущее значение в течение раневого процесса следует отдавать видам, количественно преобладающим в данном микроценозе. Имеются следующие критерии ко- личественной оценки микробного роста при пря- мом штриховом посеве тампоном раневого отде- ляемого на '/2 чашки Петри с плотной питатель- ной средой: I — очень скудный рост — рост только в жидких средах, на плотной питательной среде рост отсутствует; II — небольшое количество—на плотной среде рост до 10 колоний; I I I — умеренное количество — на плотной среде рост от 11 до 100 колоний; IV — большое количество — рост на плотной среде более 100 колоний. Показано, что уровень обсемененности тка- ней в ране, равный 10 5 КОЕ/г, является крити- ческим. Превышение этого уровня указывает на 323 |