Лабораторные методы исследования в клинике (Меньшиков В.В.) - часть 42

4.4.14. Одностадийное определение

фактора V

Метод Оврена.  П р и н ц и п . Определяется

протромбиновое время свертывания разведен-

ной исследуемой плазмы при компенсации воз-

можного дефицита всех факторов протромбино-

вого комплекса, кроме фактора V.

Р е а к т и в ы . 1. 3,8 % раствор цитрата нат-

рия (см. 4.1). 2. 0,025 моль/л раствор хлорида

кальция (см. 4.4.2). 3. Тромбопластин-кальцие-

вая смесь (см. 4.4.4). 4. Буфер Михаэлиса

рН 7,35 (см. 4.3.5). 5. Субстратная плазма:

цитратная бестромбоцитарная плазма больного

с тяжелой недостаточностью фактора свертыва-

ния V. Плазма, лишенная фактора V, может

быть приготовлена также искусственно. Для

этого венозную кровь здорового человека сме-

шивают с реактивом Винтроба (см. 4.4.12) в

соотношении  9 : 1 , после чего центрифугируют

20 мин при 4500—6000 об/мин. Супернатант от-

сасывают, разливают в пробирки по 3—5 мл,

герметично закрывают последние и инкубируют

при 37 °С в течение 18—36 ч, периодически

проверяя протромбиновое время плазмы. Инку-

бацию прекращают, когда оно станет равным

60 с и более. В такой плазме сохраняются фак-

торы II,  V I I и X, но отсутствует фактор V. При-

готовленную субстратную плазму разливают по

1—3 мл в пенициллиновые флаконы, укупори-

вают их и хранят при —20 °С.

О б о р у д о в а н и е .  1 . Водяная баня

на 37 °С. 2. Секундомеры.

М а т е р и а л  д л я  и с с л е д о в а н и я .

Тромбоцитная плазма.

Х о д  о п р е д е л е н и я . Исследование про-

водят так же, как при одностадийном определе-

нии фактора II (см. 4.4.13), но вместо субстрат-

ного реактива используют субстратную плазму,

лишенную фактора V. Построение калибровоч-

ной кривой и определение по ней содержания

фактора V в исследуемой плазме проводят так

же, как при определении фактора  I I .

К л и н и ч е с к о е  з н а ч е н и е . Снижение

уровня фактора V наблюдается при наследст-

венном дефиците фактора V, а также при ряде

заболеваний, сопровождающихся нарушением

его синтеза (болезни печени), повышенным по-

треблением (внутрисосудистое свертывание кро-

ви) или расщеплением (активация системы фиб-

ринолиза).

Л и т е р а т у р а . Баркаган 3. С. Исследо-

вание системы гемостаза в клинике (методи-

ческие указания).— Барнаул, 1975, с. 127—130;
Саеп 1., Larrieu М. 1., Samama M. L'hemostase.

Methodes d'exploration et diagnostic pratique.—

Paris, 1968, p. 120—122, 129.

4.4.15. Одностадийное определение

фактора  V I I

Метод Оврена.  П р и н ц и п . Определяется

протромбиновое время разведенной исследуемой

плазмы при компенсации возможного дефицита

всех факторов протромбинового комплекса,

кроме фактора  V I I .

Р е а к т и в ы . 1. 3,8 % раствор цитрата нат-

рия (см.  4 . 1 ) . 2. 0,025 моль/л раствор хлорида

кальция (см. 4.4.2). 3. Буфер Михаэлиса рН 7,35

(см. 4.3.5). 4. Тромбопластин и тромбопластин-

кальциевая смесь (см. 4.4.4). 5. Субстратная

плазма (цитратная бестромбоцитарная плазма

больного с тяжелой недостаточностью фак-

тора  V I I ) .

О б о р у д о в а н и е . 1. Водяная баня на

37 °С. 2. Секундомеры.

М а т е р и а л  д л я  и с с л е д о в а н и я .

Тромбоцитарная плазма.

Х о д  о п р е д е л е н и я . Исследование про-

водят так же, как при определении активности

фактора V.

К л и н и ч е с к о е  з н а ч е н и е . Уменьше-

ние содержания (активности) фактора  V I I на-

блюдается при врожденном дефиците или моле-

кулярном дефекте фактора VII, приеме непря-

мых антикоагулянтов, паренхиматозных пора-

жениях печени и К-витаминной недостаточности

(механическая желтуха, кишечный дисбакте-

риоз).

П р и м е ч а н и е . В качестве субстратной

плазмы можно использовать также профиль-

трованную через фильтр Зейтца нормальную

плазму (см. 4.4.12). В ней отсутствуют фак-

торы  V I I и X, поэтому с применением описан-

ного принципа можно оценить суммарную ак-

тивность факторов  V I I и X. После этого сле-

дует определить лебетокс-время испытуемой

плазмы и таким образом отдифференциро-

вать недостаточность фактора  V I I (лебетокс-

время нормальное) от недостаточности фак-

тора X (лебетокс-время удлиненное).
Л и т е р а т у р а . Баркаган 3. С. Исследо-

вание системы гемостаза в клинике (методи-

ческие указания).— Барнаул, 1975, с. 130—132,

135; Caen J., Larrieu М. 1., Samama M. L'hemo-

stase. Methodes d'exploration et diagnostic pra-

tique.—Paris, 1968, p. 125—127, 129.

4.4.16. Методы,

характеризующие концентрацию

(активность) антикоагулянтов

Наибольшее значение имеют методы опреде-

ления циркулирующих антикоагулянтов (см.

примечание 4.4.3) и антитромбинов. Из числа

быстродействующих антитромбинов наиболее

известными являются гепарин (точнее образую-

щийся при его введении комплекс гепарин — ан-

титромбин  I I I ) и продукты деградации фибрин-

(оген)а, а из медленно действующих — анти-

тромбин  I I I . Методы определения продуктов де-

градации фибрина рассмотрены в подразделе

4.5, а методы определения антитромбина  I I I

не приводятся, так как они очень трудоемкие

(коагулологические) или требуют применения

иностранных реактивов (амидолитические,

иммунологические).

Определение концентрации гепарина в плаз-

ме.  П р и н ц и п . Определяют минимальную

концентрацию протамина сульфата, необходи-

мую для нейтрализации гепарина в исследуемой

167

плазме. Найденную концентрацию переводят в

единицы нейтрализованного гепарина.

Р е а к т и в ы. I. 3,8 % раствор цитрата нат-

рия или 1,34 % раствор оксалата натрия (см.

4.1). 2. I % раствор протамина сульфата.

3. Раствор тромбина с активностью 15 с (см.

4.4.6). 4.  И м и д а з о л о в ы й буфер рН 7,4; раство-

ряют 1,36 г имидазола в 100 мл бидистиллиро-

ванной воды. В другую колбу вместимостью

100 мл набирают 25 мл приготовленного раст-

вора  и м и д а з о л а , добавляют 13,6 мл 0,1 н. НС1

и доводят дистиллированной водой общий объем

до 100 мл.

О б о р у д о в а н и е . 1. Водяная баня на

37 °С. 2. Секундомеры.

М а т е р и а л  д л я  и с с л е д о в а н и я .

Бестромбоцитная плазма.

Х о д  о п р е д е л е н и я .  И з  1 % раствора

протамина сульфата готовят растворы с кон-

ц е н т р а ц и я м и протамина сульфата 100; 10; 5; 2,5

и 1,25 мкг/мл (путем соответствующего разве-

дения буфером). Набирают в 5 пустых пробирок

по 0,1 мл плазмы. В первую пробирку добавляют

0,1 мл 100 мкг/мл раствора протамина сульфата,

во вторую 0,1 мл 10 мкг/мл раствора про-

т а м и н а сульфата и т. д. Последовательно поме-

щают пробирки в водяную баню на 1 мин и оп-

ределяют время образования сгустков при до-

бавлении 0,1 мл раствора тромбина. Устанавли-

вают наиболее низкую концентрацию протамина

сульфата, которая полностью нормализует тром-

биновое время. Активность гепарина в  п л а з м е

рассчитывают, исходя из того, что 1 мг прота-

мина сульфата нейтрализует 85 ЕД гепарин;]

(международного стандарта).

Н о р м а л ь н ы е  в е л и ч и н ы .  П р и н и -

мается, что в крови здоровых людей гепарина
нет.

К л и н и ч е с к о е  з н а ч е н и е . Устанав-

ливается уровень гепарина в крови при его вве-

дении в больших (лечебных) дозах.

П р и м е ч а н и е. С применением протамина
сульфата может быть определена концентра-

ция гепарина и в цельной крови.
Л и т р а т у р а . Howie Е. ]. W., Thomp-

son 1. II., nidialicim P., Owen C. A. Mayo clinic

laboratory  m a n u a l of hemostasis.— W. B. Saun-

i l e r s company, 1971, p. 123—125; Caen 1., Lur-

rieit M. 1., Samama M. L'hemostase. Methodes

< I V \ p l o r ; i l i o i i  e l diagnostic  p r a t i q u e .  P a r i s ,

1968, p. 202-203.

4.4.17. Методы, характеризующие

конечный этап свертывания крови

(фибриноген и его производные,

активность фактора  X I I I )

Определение фибриногена и его производ-

ных в плазме. Распространенные методы опре-

деления фибриногена основаны на превраще-

нии фибриногена плазмы в фибрин (посредством

рекальцификации, добавления тромбопластина

и т. п.) с его последующим подсушива-

нием и  н а в е ш и в а н и е м или растворением, окра-

шиванием и колориметрированием, а также на
осаждении фибриногена (путем высаливания

или тепловой денатурации). В  к л и н и ч е с к о й

168

практике нередко применяются и иммунологи-

ческие методы, в частности при подозрении на

дисфибриногенемию. С практической точки зре-

н и я зачастую важно определить не только кон-
центрацию свертываемого тромбином фибрино-

гена, но и концентрацию ряда высокомолекуляр-

ных производных фибриногена (растворимого

фибрина, растворимых комплексов фибрин-

мономера), которые не трансформируются в

фибрин при добавлении тромбина. Для их обна-

ружения и определения предложены «парако-

агуляционные пробы», а также методы, осно-

ванные на применении  п р и н ц и п о в гель-фильтра-

ции и гель-электрофореза. В клинике чаще

всего используются «паракоагуляционные про-

бы», в частности этаноловая и протаминсуль-

фатная.

Унифицированный гравиметрический метод

определения фибриногена (1974). Рекомендуе-

мый в настоящее время вариант с использова-

нием тромбина. II р и н ц и п. Высушивается

и взвешивается сгусток, образующийся при до-

бавлении к определенному объему плазмы раст-

вора тромбина стандартной активности.

Р е а к т и в ы . 1. 1,34% раствор оксалата

н а т р и я или 3,8% раствор цитрата натрия (см.

4.1). 2. 0,85 % раствор хлорида натрия. 3. Раст-

вор  т р о м б и н а в 0,85 % растворе хлорида натрия

с активностью 10 с (см. 4.4.6).

О б о р у д о в а н и е .  1 . Водяная баня

на 37 °С. 2. Секундомеры.

М а т е р и а л  д л я  и с с л е д о в а н и я .

Бестромбоцитарная плазма.

Х о д  о п р е д е л е н и я . Набирают в про-

бирку 1 мл плазмы, добавляют в нее 0,2 мл

раствора тромбина и немедленно опускают в

пробирку стеклянную палочку. Включают секун-

домер и ставят пробирку на водяную баню.

Образующийся фибрин наматывают на стеклян-

ную палочку, которую вынимают через 10  м и н

инкубации (если сгусток не извлекается, то со-

держимое пробирки вытряхивают в чашку Пет-

р и ) . Сгусток переносят на беззольный фильтр,

высушивают и взвешивают на торсионных весах.

Н о р м а л ь н ы е  в е л и ч и н ы : 9—15 мг.

При умножении массы сухого фибрина на пере-

водной коэффициент 25 получают значение кон-

центрации фибриногена в мг% (г/л). Норма

200—400 мг% (2—4  г / л ) .

К л и н и ч е с к о е  з н а ч е н и е . Уменьше-

ние концентрации фибриногена наблюдается

при его врожденной недостаточности (афибри-

ногенемия, гипофибриногенемия, некоторые дис-

фибриногенемии), тяжелых заболеваниях пе-

чени, диссемипированном внутрисосудистом

свертывании крови, остром фибринолизе. Увели-

чение концентрации фибриногена отмечается

при инфекционных заболеваниях, хронических

воспалительных процессах, злокачественных но-

вообразованиях, тромбозах и тромбоэмболиях,

во время беременности, после травм, родов и

операций.

Л и т е р а т у р а . Балуда В. П., Барка-

ган 3. С., Гольдберг Е. Д. и др. Лабораторные

методы исследования системы гемостаза.—

Томск, 1980, с. 192.

Унифицированный колориметрический метод

определения фибриногена (1974).  П р и н ц и п .

Путем добавления раствора тромбина фибрино-

ген плазмы превращают в фибрин, затем его

подвергают гидролизу и в гидролизате опреде-.

ляют концентрацию белка по биуретовой реак-

ции.

Р е а к т и в ы . 1. 1,34% раствор оксалата

натрия или 3,8 % раствор цитрата натрия (см.

4 . 1 ) . 2. 0,85% раствор хлорида натрия.

3. Раствор тромбина в 0,85 % растворе хлорида

натрия с активностью 7—10 с (см. 4.4.6).

4. 1 н. раствор NaOH. 5. Биуретовый реактив:

к 1,5 г сульфата меди добавляют 6 г сегнетовой

соли (КNaС

4

Н

4

О

6

-4Н

2

О) и 500 мл дистиллиро-

ванной воды. К этому раствору при постоянном

помешивании добавляют 300 мл 10 % раствора

NaOH и доводят дистиллированной водой общий

объем до 1 л. 6. Фибриноген бычий или челове-

ческий с известной концентрацией свертывае-

мого белка.

О б о р у д о в а н и е .  1 . Водяная баня

на 37 "С. 2. Фотоэлектроколориметр. 3. Секундо-

метр.

М а т е р и а л  д л я  и с с л е д о в а н и я .

Бестромбоцитарная плазма.

Х о д  о п р е д е л е н и я .  В 2 пробирки (для

параллельных определений) вводят по 0,2 мл

плазмы, добавляют по 0,1 мл раствора тром-

бина и ставят пробирки в водяную баню. Через

1 ч сгустки извлекают, трижды промывают ох-

лажденным 0,85 % раствором хлорида натрия и

высушивают на фильтровальной бумаге. Каж-

дый из сгустков помещают в пробирку с 1 мл

раствора NaOH и ставят пробирки на 5  м и н в

кипящую воду. Пробы охлаждают до комнатной

температуры и добавляют в каждую пробирку

по 1 мл биуретового реактива. Через 30  м и н

пробы колориметрируют в кювете с длиной оп-

тического пути 10 мм при длине волны 500—

560 нм (зеленый светофильтр) против дистил-

лированной воды. Для определения количества

фибриногена в мг% (г/л) предварительно

строят график соотношения между показаниями

ФЭКа и концентрациями фибриногена в раст-

иире. Для этого используют стандартные разве-

дения чистого фибриногена (коагулируемого

белка) в пределах от 50 до 1000 мг% (от 0,5

до 10  г / л ) .

Н о р м а л ь н ы е  в е л и ч и н ы . 200

350 мг% (2—3,5  г / л ) .

К л и н и ч е с к о е  з н а ч е н и е . См. грави-

метрический метод.

Л и т е р а т у р а . Детинкина Г. Н., //ын-

кина И. М., Торик Ж- Н. Предложения по уни-

фикации методов исследования системы гемо-

стаза.—Лаб. дело, 1984, № 4, с. 227 и № 5,

с. 272—273.

Этаноловый тест.  П р и н ц и п . Наблюдают

за образованием геля в плазме после добавле-

ния 50 % раствора этанола. При  н а л и ч и и в плаз-

ме комплексов фибрин-мономера с продуктами

расщепления фибриногена/фибрина и фибрино-

геном происходит высвобождение  ф и б р и н - м о н о -

мера, который затем полимеризуется с образова-

нием геля.

Р е а к т и в ы. 1. 3,8 % раствор цитрата нат-

рия (см.  4 . 1 ) . 2. 50% раствор этанола.

О б о р у д о в а н и е .  Н е требуется.

М а т е р и а л для и с с л е д о в а н и я.

Бестромбоцитарная плазма.

Х о д  о п р е д е л е н и я . В пробирку вводят

0,15 мл 50 % раствора этанола и 0,5 мл плазмы,

пробирку встряхивают и помещают в штатив при

комнатной температуре. Если через 1 —10  м и н в

пробирке образуется гель, то проба считается

положительной («1»).

Н о р м а л ь н ы е  п о к а з а т е л и . Помут-

нение или появление небольшой зернистости

(отрицательный результат— «О»).

К л и н и ч е с к о е  з н а ч е н и е . Положи-

тельная проба указывает на присутствие в плаз-

ме комплексов фибрин-мономера с продуктами

расщепления фибриногена/фибрина и фибрино-

геном, что рассматривается как важный лабо-

раторный критерий диссеминированного внутри-

сосудистого  с в е р т ы в а н и я крови или массивного

тромбоза, сопровождающихся активацией си-

стемы фибринолиза. По сравнению с протамин-
сульфатным тестом (см. далее) этот тест чувст-

вительнее к растворимым комплексам фибрин-

мономера.

Л и т е р а т у р а . Breen F. A., Tullis J. L.

Ethanol gelation: a  r a p i d screening lest  f o r  i n -

t r a v a s c u l a r coagulation.—  A n n .  i n t e r n nied..

v o l . 69, № 6, p. 1197—1206; Ingram G. I. C..

Brozovic M., Staler N. (i. P. Bleeding  d i s o r d e r s

i n v e s t i g a t i o n  a n d management.-  B l a c k w e l l

s c i e n t i f i c  p u b l i c a t i o n , 1982, p. 304.

Протаминсульфатный тест.  П р и н ц и п .

Наблюдают за образованием геля в плазме

после добавления слабых растворов  п р о т а м и н а

сульфата. Подобно 50 % раствору этанола они

вызывают высвобождение фибрин-мономера из

его растворимых комплексов с последующей по

лимеризацией, а также осаждение  р а н н и х про-

дуктов расщепления фибриногена/фибрина.

Р е а к т и в ы . 1. 3,8 % раствор цитрата нат-

рия (см. 4.1). 2. 0,85 % раствор хлорида нат-

рия. 3. 1 % раствор  п р о т а м и н а сульфата в 0,85 %

растворе хлорида натрия рН 6,0.

О б о р у д о в а н и е .  Н е требуется.

М а т е р и а л  д л я  и с с л е д о в а н и я .

Бестромбоцитарная плазма, полученная путем

центрифугирования нитратной крови или бога-

той тромбоцитами плазмы при 2000 об/мин в

течение 30  м и н .

Х о д  о п р е д е л е н и я .  1 % раствор про-

тамина сульфата разводят последовательно

0,85 % раствором хлорида натрия в 5; 10; 20; 40;

и 80 раз; 0,2 мл каждого из приготовленных

растворов переносят в соответствующим обра-

зом помеченные 5 пробирок (в одну пробирку

один раствор) и добавляют в каждую пробирку

по 0,2 мл исследуемой плазмы. Пробирки остав-

ляют на 30 мин при комнатной температуре, а

затем исследуют их в прямом свете на темном

фоне. Образование геля и фибриновых нитей

у ч и т ы в а ю т как положительный результат

(«1»), а образование зерен или помутнение —

как отрицательный результат («О»).

169

Н о р м а л ь н ы е  в е л и ч и н ы . Отрица-

тельный результат во всех разведениях прота-

мина сульфата.

К л и н и ч е с к о е  з н а ч е н и е . Образо-

вание геля или нитей фибрина хотя бы в одном

из разведений протамина сульфата рассматри-

вается как указание на повышение уровня раст-

воримых комплексов фибрин-мономера и/или

р а н н и х продуктов деградации фибрина. Это на-

блюдается при остром внутрисосудистом сверты-

вании крови и массивных тромбозах. Выпадение

положительного результата только в первых

1—2 пробирках более характерно для увеличе-

ния концентрации растворимых комплексов фиб-

рин-мономеров, а положительный результат в

пробирках всего ряда более характерен для по-

вышения уровня ранних продуктов расщепления

фибриногена/фибрина.

Л и т е р а т у р а . Niewiarowski S., Gu-

rewich V.  L a b a r a t o r y  i d e n t i f i c a t i o n of  i n t r a v a -

s c u l a r coagulation: the SDPS test for the detec-

tion of  f i b r i n monomer and  f i b r i n degradation

products.— J. Lab. clin med., 1971, vol. 77,

p. 665—676.

Унифицированный ускоренный метод опреде-

ления фактора  X I I I (1974).  П р и н ц и п . Опре-

деляется время растворения сгустка плазмы в

растворе мочевины после инкубации плазмы с

монойодуксусной кислотой, блокирующей актив-

ность фактора  X I I I , и рекальцификации.

Р е а к т и в ы . 1. 1,34% раствор оксалата

натрия или 3,8 % раствор цитрата натрия

(см. 4.1). 2. 0,5% раствор монойодуксусной

кислоты: растворяют 0,5 г монойодуксусной кис-

лоты (СH

2

IСООН) в 100 мл бидистиллирован-

ной воды. При работе с реактивом необходимо

соблюдать осторожность, так как это летучее,

раздражающее и аллергизирующее вещество.

3. 0,025 моль/л раствор хлорида кальция.

4. 0,12 % раствор кислой щавелевокислой мо-

чевины.

О б о р у д о в а н и е . Секундомер.

М а т е р и а л  д л я  и с с л е д о в а н и я .

Тромбоцитарная плазма.

Х о д  о п р е д е л е н и я . К 0,2 мл исследуе-

мой плазмы добавляют 0,1 мл раствора моно-

йодуксусной кислоты и 0,4 мл раствора хлорида

кальция. Перемешивают содержимое пробирки

встряхиванием и оставляют на 20 мин при ком-

натной температуре. К образовавшемуся сгустку

добавляют 2 мл раствора кислой щавелево-

кислой мочевины и определяют с помощью се-

кундомера время полного растворения фибри-

нового сгустка при постоянном встряхивании.

Исследование проводят дважды и вычисляют

средний результат. Точно так же определяют

время растворения фибриновых сгустков здоро-

вого человека.

Активность фактора  X I I I в исследуемой

плазме определяют по формуле: активность фак-

тора  X I I I =А/В-100 %, где А — время лизиса

сгустка исследуемой плазмы; В — время лизиса

сгустка нормальной плазмы.

Н о р м а л ь н ы е  в е л и ч и н ы : 70±15  с ,

что принимается за 100 %.

К л и н и ч е с к о е  з н а ч е н и е . Уменьше-

ние активности фибринстабилизирующего фак-

тора наблюдается при его врожденной недо-

статочности или в связи «с потреблением» при

массивном внутрисосудистом свертывании

крови.

П р и м е ч а н и я . При нарушении первой

фазы свертывания крови (гемофилия) для

образования сгустка необходимо добавить,

кроме хлористого кальция, 0,1 мл раствора

тромбина с активностью 10—20 с. 2. Тяже-

лая недостаточность фактора  X I I I (менее

1 % от нормы) может быть распознана по

растворению сгустка исследуемой плазмы

в 1 % растворе монохлоруксусной кислоты

или 30 % растворе мочевины в течение 1 ч

(сгустки нормальной плазмы при этом не

растворяются).

Л и т е р а т у р а . Балуда В. П., Барка-

гаи 3. С., Гольдберг Е. Д. и др. Лабораторные

методы исследования системы гемостаза.—

Томск, 1980, с. 196—198; Caen  J . , Larrieu M.  J . .

Samama M. L'hemostase. Mehodes d'exploration

et diagnostic pratique.— Paris, 1968, p. 192—193.

4.5. МЕТОДЫ ИССЛЕДОВАНИЯ  Ф И Б Р И Н О Л И Т И Ч Е С К О Й

СИСТЕМЫ КРОВИ

( Ф И Б Р И Н О Л И Т И Ч Е С К О Г О ЗВЕНА ИЛИ  К О М П О Н Е Н Т А

СИСТЕМЫ ГЕМОСТАЗА)

Известны общеоценочные методы и методы

определения отдельных компонентов фибрино-

литической системы: плазмина — фермента,

расщепляющего фибрин, а при некоторых усло-

виях также фибриноген и другие факторы свер-

тывания крови, плазминогена — неактивного

предшественника плазмина, активаторов плаз-

миногена, ингибиторов активации плазминогена
и ингибиторов плазмина. Общеоценочные методы

основаны на измерении времени лизиса (раст-

ворения) сгустков исследуемой крови (цельной,

разведенной) или эуглобулиновой фракции

плазмы, на оценке степени лизиса сгустков ис-

следуемой разведенной плазмы за стандартное

время или на исследовании интенсивности ли-

зиса стандартных сгустков (пленок, пластин)

фибрина под действием исследуемой плазмы или

ее эуглобулиновой фракции. Отдельные компо-

ненты системы фибринолиза могут быть изу-

чены с применением тех же подходов, но после

170