Лабораторные методы исследования в клинике (Меньшиков В.В.) - часть 30

Метод 3: в пробирку помещают 0,3—0,5 мл

раствора краски 2 и 5—6 капель крови пипеткой

от аппарата Паиченкова. Пробирку закрывают

резиновой пробкой, смесь тщательно, но осто-

рожно перемешивают и оставляют на I — l'/2

 ч

(лучше окрашиваются ретикулоциты при экс-

позиции 1 1/2—3 ч). Перемешивают и готовят

тонкие мазки.

П о д с ч е т  р е т и к у л о ц и т о в . В маз-

ках эритроциты окрашены в желтовато-зелено-

ватый цвет, зернисто-нитчатая субстанция — в

синий или синевато-фиолетовый цвет.

Приготовленные одним из указанных выше

способов мазки микроскопируют с иммерсион-

ным объективом. Необходимо подсчитать не ме-

нее 1000 эритроцитов и отметить среди них коли-

чество эритроцитов, содержащих зернисто-нит-

чатую субстанцию. Практически для большей

точности пользуются специальным окуляром, в

котором можно уменьшить поле зрения до тре-

буемых размеров. При равномерных тонких маз-

ках, в которых эритроциты расположены в один

ряд, подбирают такое поле зрения, в котором

имеется, например, 50 эритроцитов, и затем про-

считывают 20 таких полей зрения.

При отсутствии готового окуляра его можно

легко приготовить, для чего отвинчивают окуляр

7Х, вкладывают в него кусок бумаги с выре-

занным небольшим квадратиком и завинчивают.

Количество подсчитанных ретикулоцитов выра-

жают на 1000 или на 100 эритроцитов.

Подсч|ет количества ретикулоцнтов при по-

мощи люминесцентной микроскопии.  П р и н -

ц и п . Использование способности субстанции

ретикулоцитов флюоресцировать после обра-

ботки крови акридиновым оранжевым.

Р е а к т и в ы . 1. Раствор акридинового

оранжевого на изотоническом растворе хлорида

натрия и концентрации 1 : 5000. Для приготов-

ления изотонического раствора рекомендуют ис-

пользовать дистиллированную воду рН 5,8—6,8,

Раствор акридинового оранжевого должен быть

свежим; хранят его не более 3—5 дней в темном

флаконе с притертой пробкой. 2. Нефлюоресци-

рующее иммерсионное масло. Можно использо-

вать афлуоль или обычное иммерсионное масло

с флюоресценцией, погашенной нитробензолом

(0,3 мл нитробензола на 1 мл масла). Ю. Н. Зуб-

жицкий в качестве нефлюоресцирующего масла

предлагает использовать перегнанный анизол.

С п е ц и а л ь н о е  о б о р у д о в а н и е .

Микроскоп ультрафиолетовый МУФ-ЗМ или лю-

минесцентный.

Х о д о п р е д е л е н и я . Кровь смешивают с

акридиновым оранжевым в пробирке или смеси-

теле в соотношении 1 часть крови и 10 частей

краски (смесь можно хранить не более 5 ч).

Смесь перемешивают в течение 2 мин, каплю

смеси наносят на предметное стекло и накрыва-

ют покровным стеклом. Микроскопируют с по-

мощью светофильтра ЖС-17. В препарате

эритроциты не флюоресцируют, а в ретикулоци-

тах зернисто-нитчатая субстанция светится

ярко-красным цветом. Замечено, что в крови,

стабилизированной гепарином или цитратом

натрия, флюоресценции ретикулоцитов не на-

блюдается. Метод отличается простотой и тре-

бует немного времени; благодаря яркому свече-

нию ретикулоциты легко подсчитать.

Н о р м а л ь н ы е  в е л и ч и н ы . У здоро-

вых число ретикулоцитов составляет 2—12

 0

/

0

о,

или 0,2—1,2 %.

К л и н и ч е с к о е  з н а ч е н и е . Число рети-

кулоцитов в крови отражает регенеративные

свойства костного мозга, и оценка его широко

используется при различных анемиях (см.

табл. 24). Повышение количества ретикулоци-

тов наблюдается после кровопотери, при гемо-

литических анемиях, особенно в период криза

(количество ретикулоцитов может быть 20—

30 %), а также на фоне лечения анемии Адди-

сона—Бирмера витамином В12 (ретикулоци-

тарный криз — подъем числа ретикулоцитов на

4—8-й день лечения). Снижение количества

ретикулоцитов характерно для гипопластиче-

ской анемии, редицива анемии Аддисона—

Бирмера.

Определение количества ретикулоцитов мо-

жет быть использовано для определения про-

дукции эритропоэза и вычисления срока жизни

эритроцитов.

Л и т е р а т у р а . Гомзякова Н. В. Лаб, дело,

1960, № 5, с. 38—39; Зубжицкий Ю. Н. Лаб.

дело; 1967, № 2, с. 35; Кориков П. Н. Лаб. дело,

1961, № 4, с. 10.

180 г, дистиллированная вода — до 2 л. Раствор

можно хранить в закрытой посуде в холодиль-

нике в течение нескольких месяцев.

Основной раствор разводят в 10 раз и полу-

чают раствор, соответствующий по своей осмо-

тической концентрации 1 % раствору хлорида

натрия. Из этого раствора готовят рабочие раст-

воры хлорида натрия следующих концентраций:

0,85; 0,75; 0,70; 0,65; 0,60; 0,55; 0,50; 0,45; 0,40;

0,35; 0,30; 0,20; 0,10%. Можно приготовить

по 100 мл этих рабочих растворов и сохранять

их в холодильнике. Годны в течение 2 нед.

С п е ц и а л ь н о е  о б о р у д о в а н и е .  1 .

Фотоэлектроколориметр. 2. Термостат на 37 "С.

119

3.3.7. Резистентность эритроцитов

Для оценки физико-химических свойств эрит-

роцитов исследуют стойкость (резистентность)

эритроцитов к различным воздействиям. Наи-

большее распространение в клинической прак-

тике получило исследование осмотической ре-

зистентности эритроцитов.

Унифицированный метод определения осмо-

тической резистентностн эритроцитов в модифи-

кации Л. И. Идельсона (1974).  П р и н ц и п .

Количественное определение степени гемолиза

эритроцитов в забуферных гипотонических раст-

ворах хлорида натрия.

Р е а к т и в ы . Основной раствор (по своей

осмотической концентрации соответствует 10 %

раствору хлорида натрия) имеет рН 7,4, состав

раствора: двузамещенный фосфат натрия

Х о д  о п р е д е л е н и я . В две стерильные

пробирки с предварительно внесенными 2 кап-

лями гепарина берут по 1,5 мл крови, перемеши-

вают и одну используют для исследования, вто-

рую — оставляют на сутки в термостате. В ряд

центрифужных пробирок (14 штук) разливают

по 5 мл рабочих растворов хлорида натрия кон-

центраций от 1 до0,10 %. В каждую центрифуж-

ную пробирку добавляют по 0,02 мл перемешан-

кой гепаринизнрованной крови и оставляют при

комнатной температуре на 30 мин. Центрифуги-

руют смесь крови с растворами хлорида натрия

при 2000 об/мин в течение 5 мин. Из каждой

пробирки сливают надосадочную жидкость и из-

меряют на фотоэлектроколориметре при длине

волны 500—56O нм (зеленый светофильтр) в кю-

вете с толщиной слоя 10 мм против холостой

пробы.

Холостая проба — надосадочная жидкость

в пробирке, содержащей 1 % раствор хлорида

натрия.

Р а с ч е т . За 100% гемолиз принимают

гемолиз в пробирке, содержащей 0,1 % раствор

хлорида натрия. Вычисляют процент гемолиза в

каждой пробирке, сравнивая величины экстинк-

ции надосадочной жидкости с экстинкцией, при-

нятой за 100 %, по формуле:

цент гемолиза в пробирке с 0,1 % раствором хло-

рида натрия.

На следующий день повторяют исследование

с кровью, инкубированной 24 ч при 37 °С.

Н о р м а л ь н ы е  в е л и ч и н ы . У здоро-

вых в свежей крови начало гемолиза отмечают

при концентрации хлорида натрия 0,50—0,45 %,

а полный гемолиз — при 0,40—0,35 % растворе

хлорида натрия.

К л и н и ч е с к о е  з н а ч е н и е . Исследо-

вание проводят при подозрении на гемолити-

ческую анемию. Понижение осмотической ре-

зистентности, т. е. появление гемолиза эритроци-

тов при более высокой, чем в норме, концентра-

ции хлорида натрия (0,70—0,75 %), наблюда-

ется при наследственном мнкросфероцитозе и

некоторых наследственных несфероцитарных ге-

молитических анемиях, а также иногда при ауто-

иммунной гемолитической анемии. В ряде случа-

ев понижение осмотической резистентности вы-

является только при исследовании инкубирован-

ной крови. Повышение осмотической резистент-

ности характерно для талассемии, гемоглобино-

патии.

Л и т е р а т у р а , Идельсон Л. И, В кн.:

Справочник по функциональной диагностике /

Под ред. И. А. Кассирского.— М., Медицина,

1970, с. 401.

3.3.8. Пробы на ферментопатню

эритроцитов

При несфероцитарных гемолитических ане-

миях возникает необходимость исследования ак-

тивности ферментов в эритроцитах. В эритро-

цитах содержатся ферменты гликолиза, пенто-

зофосфатного цикла, системы глютатиона, аде-

ниловой системы и других реакций обмена, бло-

када которых может быть связана с дефицитом

ферментов.

Наиболее распространенной наследственной

ферментопатией эритроцитов является дефицит

глюкозо-6-фосфатдегидрогеназы (Г-6-ФД), от-

носящейся к ферменту пентозофосфатного цик-

ла. Для диагностики дефицита Г-6-ФД наиболее

достоверным является количественное опреде-

ление активности ферментов в эритроцитах. В

условиях практической работы могут быть вы-

полнены качественные пробы, имеющие ориен-

тировочное значение.

Тест на образование телец Гейнца—Эрлиха

по Дейчи.  П р и н ц и п . Инкубация эритроци-

тов с метиловым фиолетовым и появлением окра-

шенных телец в большом количестве в патоло-

гических эритроцитах.

Р е а к т и в ы . 0,5 % раствор метилового

фиолетового в изотоническом растворе хлорида

натрия.

С п е ц и а л ь н о е  о б о р у д о в а н и е .

Микроскоп.

Х о д  о п р е д е л е н и я . Смешивают в про-

бирке равные количества крови н раствора ме-

тилового фиолетового. Тщательно перемеши-

вают и оставляют на 10 мин. Готовят мазки

на предметном стекле, накрывают покровным

и микроскопируют с иммерсионным объективом.

Н о р м а л ь н ы е  в е л и ч и н ы . У здоро-

вых наблюдается образование в эритроцитах

единичных красного цвета телец.

К л и н и ч е с к о е  з н а ч е н и е . В патоло-

гических Г-6-ФД-дефицитных эритроцитах по-

является большее количество телец (4—6). Про-

ба не является специфичной для дефицита

Г-6-ФД, так как тельца Гейнца появляются при

передозировке сульфаниламидов, при отравле-

нии анилиновыми красителями, при дефиците

других ферментов (глютатион-редуктазы, 6-фос-

фоглюкоиатдегидрогеназы), у носителей неста-

бильных гемоглобинов.

Качественный метод Мотульского—Кемп-

беля.  П р и н ц и п . В присутствии Г-6-ФД об-

разуется NADPH, который обесцвечивает брил-

лиантовый крезиловый синий.

Р е а к т и в ы . 1, Раствор натриевой солн

глюкозо-6-фосфата (825 мг в 100 мл дистилли-

рованной воды). 2. Раствор NADP (50 мг в

100 мл дистиллированной воды). 3. Раствор

бриллиантового крезилового синего (32 мг в

100 мл дистиллированной воды). 4. Трис-буфер-

ная смесь рН 8,5 (8,96 г в 97мл дистиллирован-

ной воды + 3 мл концентрированной НС1). 5. Па-

рафин.

С п е ц и а л ь н о е  о б о р у д о в а н и е .  Н е

требуется.

Х о д  о п р е д е л е н и я . В пробирке сме-

шивают: 0,1 мл реактива 1; 0,1 мл реактива 2;

0,25 мл реактива 3; 0,2 мл реактива 4. В другую

пробирку, куда заранее внесен 1 мл дистиллиро-

ванной воды, добавляют 0,02 мл крови из паль-

ца. Смешивают содержимое обеих пробирок,

смесь покрывают 1—2 мл жидкого парафина и

120

ставят на водяную баню при 37 °С. Отмечают

время обесцвечивания смеси.

Н о р м а л ь н ы е  в е л и ч и н ы . У здоро-

вых раствор обесцвечивается черта 40—55  м и н .

К л и н и ч е с к о е  з н а ч е н и е . Замедле-

ние обесцвечивания более 90 мин свидетель-

ствует о дефиците Г-6-ФД. При гемолитической

энзимодефицитной анемии обесцвечивание на-

ступает через 3—24 ч.

Качественный метод по Бернштейну.  П р и н -

ц и п тот же, что и в методе Мотульского—

Кемпбеля, но окраска бриллиантовым крезило-

вым синим заменена дихлорфенилиндофенолом.

Р е а к т и в ы . 1. Раствор 2,6-дихлорфени-

линдофенола (14,5 мг на 100 мл буферного

раствора трис НС1, рН 8,0). Буферный раствор

состоит из следующих компонентов: 1,48 М раст-

вор трисоксиметиламинометана (43,27 г на

250 мл воды) и 1,48 М раствор HCI (2 ампулы

фиксанала, содержащего 0,1 г-экв, доводят во-

дой до 135 мл). К 230 мл раствора трис добав-

ляют 110 мл раствора НС1 и доводят водой до

460 мл. 2. Раствор феназинметасульфата (2 мг

на 100 мл воды). 3. Раствор NADP (2,3 мг в

1 мл воды). 4. Раствор глюкозо-6-фосфата

(15,2 мг натриевой соли Г-6-Ф в 1 мл воды).

Из этих растворов готовят реактивную смесь

следующего состава: реактив 1—8 частей, реак-

тив 2—1 часть, реактив 3—0,5 части и реактив

4—0,5 части.

С п е ц и а л ь н о е  о б о р у д о в а н и е .  Н е

требуется.

Х о д  о п р е д е л е н и я . В пробирку с 1 мл

дистиллированной воды вносят 0,02 мл крови

из пальца. После наступления гемолиза добав-

ляют 0,5 мл реактивной смеси. Оставляют на

15—20 мин при комнатной температуре. Через

15—20 мин оценивают изменение цвета смеси.

Н о р м а л ь н ы е  в е л и ч и н ы . Обесцвечи-

вание смеси происходит через 15—20 мин.

К л и н и ч е с к о е  з н а ч е н и е . Более

позднее обесцвечивание смеси свидетельствует

о дефиците Г-6-ФД в эритроцитах. Неполное

обесцвечивание через 30 мин соответствует

уменьшению активности Г-6-ФД, а отсутствие

обесцвечивания к этому времени свидетель-

ствует о резком снижении активности

фермента.

Л и т е р а т у р а . Тодоров И. Клинические

лабораторные исследования в педиатрии. 5-е

изд. (русск.) — София, 1966, с. 313, 389; Идель-

сон Д. И.,Катоян Э. Р. Лабор. дело, 1970, № 7,

с. 428.

3.3.9. Цитохимические исследования

эритроцитов

Цитохимические исследования отличаются

простотой, не требуют специального оборудова-

ния и дают ориентировочное представление о ко-

личестве исследуемого вещества. Исследования

эритроцитов проводят с целью выявления раз-

л и ч н ы х внутриклеточных включений, наличия

разных форм гемоглобина, ферментных нару-

шений.

Сидероциты и сидеробласты — это эритро-

циты и эритробласты (нормобласты), содержа-

щие в цитоплазме негемоглобиновое железо в

виде гемосидерина и ферритина.

П р и н ц и п . Окраска с помощью реакции

на берлинскую лазурь и образование внутри-

клеточных гранул синего цвета.

Р е а к т и в ы . 1. 2% раствор железисто-

синеродистого калия. 2. 0,1 н. раствор НС1

(8,2 мл концентрированной НС1 и дистиллиро-

ванной воды до 1 л). 3. 0,1 % раствор сафрани-

на. 4. Метиловый спирт.

С п е ц и а л ь н о е  о б о р у д о в а н и е .

Микроскоп.

Х о д  о п р е д е л е н и я . Фиксируют мазки

в метиловом спирте 10—20 мин и высушивают

на воздухе. Помещают в смесь равных частей

растворов 1 и 2 при температуре 50—56 °С

на 15—20 мин. Промывают в проточной воде

10—15 мин и ополаскивают дистиллированной

водой. Докрашивают раствором сафранина 3—

5 с.

Н о р м а л ь н ы е  в е л и ч и н ы . В перифе-

рической крови число сидероцитов не превы-

шает 1,1 % и составляет в среднем 0,6 + 0,04%,

в костном мозге их несколько больше—0,9 +

+ 0,09% (в среднем 0,2—2,1%), количество

сидеробластов (ядерных эритроцитов с железо-

содержащими гранулами) в костном мозге

23,7

 + 2,4 %.

К л и н и ч е с к о е  з н а ч е н и е . Снижение

сидероцитов и сидеробластов характерно для

железодефицитных анемий. Повышение железо-

содержащих клеток наблюдается при гемолити-

ческих анемиях, гипопластических анемиях, по-

сле операции спленэктомии.

Л и т е р а т у р а . Цитологические аспекты

заболеваний системы крови/Под ред. Э. И. Те-

рентьевой, Г. И. Козинца.— М.: Медицина,

1978, с. 162.

Фетальный гемоглобин. Метод Ветке.

П р и н ц и п . Элюция гемоглобина кислотой с

докраской мазков дает возможность отличить

эритроциты, содержащие фетальный гемогло-

бин, по сохраненной окраске в отличие от обес-

цвеченных эритроцитов, содержащих гемогло-

бин А.

Р е а к т и в ы .  1 . Цитратно-фосфатный бу-

фер (рН 3,2): 24,7 мл 0,2 М раствора Na

2

HPO

4

(35,6 г Na

2

HPO

4

 • 2Н

2

О и до 1 л дистиллирован-

ной воды) и 75,3 мл 0,1 М раствора лимонной

кислоты (21,01 г лимонной кислоты и до 1 л ди-

стиллированной воды). 2. 1 % раствор метило-

вого фиолетового или 1 % раствор эозина. Луч-

шие результаты дает докраска метиловым фио-

летовым. 3. Этиловый спирт 80 %.

С п е ц и а л ь н о е  о б о р у д о в а н и е .  1 .

Микроскоп. 2. Термостат на 37 °С.

Х о д  о п р е д е л е н и я . Фиксируют мазки

крови в 80 % этиловом спирте 5 мин. Промы-

вают дистиллированной водой и высушивают.

Погружают мазки на 5 мин в прогретый при

37 °С в течение 30 мин цитратно-фосфатный

буфер (для элюции гемоглобина), периодически

помешивая раствор стеклянной палочкой для

удаления пузырьков воздуха. Ополаскивают

121

мазки дистиллированной водой, высушивают

фильтровальной бумагой. Докрашивают реакти-

вом 2 в течение 2—3 мин. Промывают дистил-

лированной водой и высушивают.

Н о р м а л ь н ы е  в е л и ч и н ы . У взрослых

встречаются единичные окрашенные эритроциты

(содержащие гемоглобин F); увеличение числа

окрашенных эритроцитов наблюдается у ново-

рожденных и детей до 5-месячного возраста.

К л и н и ч е с к о е  з н а ч е н и е . Увеличе-

ние числа эритроцитов с гемоглобином F наблю-

дается у больных талассемией, особенно при

гомозиготной форме.

Л и т е р а т у р а . Исаева Е. Г., Короле-

ва А. М. Лаб. дело, 1965, № 4, с. 201; Betke R.,

Kleinhauer E.  B l u t , 1958, Bd 5, S. 241.

Активность Г-6-ФД (К.Ф.1.1.1.49).  П р и н -

ц и п . Окисление глюкозо-6-фосфата в присут-

ствии Г-6-ФД при участии NADP, который

восстанавливается в  N A D P - H ; под влиянием

последнего тетразолий выявляется в виде гра-

нул формазана.

Р е а к т и в ы .  1 . 10% раствор формалина.

2. Инкубационная среда: глюкозо-6-фосфат —

3 мг в 1 мл, NADP — 1 мг в 1 мл, магния

хлорид — 0,1 М в 0,2 мл, нитросиний тетразо-

лий — 1 мг в 1 мл, трис-буфер 0,25 М (рН 7,6) —

2,3 мл, феназин-метасульфат — 0,5 мл.

С п е ц и а л ь н о е  о б о р у д о в а н и е .

1. Термостат на 37 °С. 2. Микроскоп.

Х о д  и с с л е д о в а н и я .  Н а нефиксиро-

ванные мазки крови наносят 0,1—0,2 мл инку-

бационной среды и помещают мазки в гори-

зонтальном положении в термостат на 1 ч

15 мин. Фиксируют в 10 % растворе формалина

10 мин при комнатной температуре. Высушива-

ют на воздухе и микроскопируют.

Н о р м а л ь н ы е  в е л и ч и н ы . В эритро-

цитах обнаруживают 10—20 гранул формазана.

К л и н и ч е с к о е  з н а ч е н и е . Снижение

числа гранул формазана в эритроцитах или их

отсутствие указывает на дефицит Г-6-ФД.

3.3.10. Скорость оседания

эритроцитов (СОЭ).

Исследование СОЭ является одним из самых

распространенных в лабораторной практике и

входит в состав общего клинического анализа

крови. Кроме того, нередко проводится одновре-

менно с определением концентрации гемоглоби-

на и количества лейкоцитов в крови при про-

филактических осмотрах.

Унифицированный микрометод Панченкова

(1972).  П р и н ц и п . Смесь крови с цитратом

при стоянии разделяется на два слоя (ниж-

н и й — эритроциты, верхний — плазма). При

этом СОЭ, т. е. величина столбика плазмы, бы-

вает различной в зависимости от изменений

физико-химических свойств крови.

Р е а к т и в ы. 5 % раствор трехзамещенного

цитрата натрия (C

6

H

5

O7Na

3

 • 5Н

2

О). Раствор

фильтруют (рН должен быть нейтральным или

слабощелочным). При помутнении реактив него-
ден.

С п е ц и а л ь н о е  о б о р у д о в а н и е . Ап-

парат Панченкова, состоящий из штатива и

капилляров. Пробирки и капилляры должны

быть химически чистыми, т. е. необходимо их

промыть хромовой смесью, многократно после

этого вымыть водопроводной водой и 2—3 ра-

за — дистиллированной.

Х о д  о п р е д е л е н и я . Перед использова-

нием химически чистый капилляр промывают

цитратом натрия и заполняют им пробирку на

1/4 (до метки 0,75).

Кровь из мякоти пальца (или венозную)

набирают полный капилляр (до метки 0) и пере-

носят в пробирку с цитратом (усиленно выдувая

всю кровь). При этом получают соотношение

крови и цитрата  4 : 1 . Можно брать вдвое боль-

шее количество цитрата и крови, т. е. половину

капилляра цитрата (до метки 0,5) и два полных

капилляра крови. Перемешивают содержимое

пробирки и набирают до метки 0 смесь крови

с цитратом. Закрыв пальцем верхний конец

капилляра, осторожно, чтобы кровь из капил-

ляра не вылилась, устанавливают капилляр в

штатив строго вертикально, упирая  н и ж н и й его

конец в резиновую прокладку и  п р и ж и м а я верх-

ний конец прокладкой или пробкой. Через час

отмечают скорость оседания эритроцитов по вы-

соте отстоявшегося слоя плазмы в миллиметрах.

Н о р м а л ь н ы е  в е л и ч и н ы . У мужчин

1 —10 мм/ч, у женщин 2—15 мм/ч.

При снижении температуры (<20°С) поме-

щения, в котором проводится исследование,

СОЭ замедляется, при повышении — увеличи-

вается.

К л и н и ч е с к о е  з н а ч е н и е . Увеличе-

ние СОЭ наблюдается при различных воспали-

тельных процессах, интоксикациях, острых и

хронических инфекциях, при инфаркте миокар-

да, опухолях, после кровопотери, оперативных

вмешательств. Особенно выраженное ускорение

СОЭ (60—80  м м / ч ) характерно для парапроте-

инемических гемобластозов (миеломная бо-

лезнь, болезнь Вальденстрема и др.) и симпто-

матических парапротеинемий, сопутствующих

злокачественным новообразованиям, хрониче-

скому активному гепатиту, циррозу печени, ту-

беркулезу, амилоидозу, коллагенозам. Замед-

ление СОЭ наблюдается при эритремии и симп-

томатических эритроцитозах.

3.4.  Л Е Й К О Ц И Т Ы

Лейкоциты — клетки крови, отличающиеся

характерной структурой и сложным внутрикле-
точным метаболизмом. Различные формы зре-

лых лейкоцитов являются объектом лаборатор-

ных исследований. Они различаются по форме

122

и структуре ядра, характеру цитоплазмы, ее

грануляции, ядерно-цитоплазматического соот-
ношения, тинкториальным свойствам; эти приз-

наки являются основными критериями при иссле-

довании лейкоцитов в окрашенных мазках крови.