содержание   ..  1  2  3  4  5  6  7  8   ..

13. Технология взятия кропи из вены для лабораторных исследований

        Для биохимического исследования крови по нескольким пара­метрам (исследование обмени Солкой, липидов, активности фермен­тов и др.) следует направлять в лабораторию венозную кровь в хими­ческой пробирке 8-10. Результаты исследования во многом зависят от техники взятия крови, используемых при этом инструментов, со­судов, в которых хранится кровь. При взятии крови игла должна быть с коротким срезом и достаточно больших размеров, чтобы не трав­мировать противоположную стенку вены и не вызвать повреждения эритроцитов с последующим гемолизом. Для многих веществ име­ется очень высокий перепад концентраций между эритроцитами и плазмой, так что даже незначительный гемолиз может обусловить резкое повышение концентрации определенных веществ в плазме (калия, активности КФ, АСаТ, АЛаТ, ЛДГ). В вене должен быть со­здан минимальный стаз (продолжительный стаз крови в венах руки повышает концентрацию кальция, общего белка).

        Кровь брать сухим охлажденным шприцем, спускать без иглы в сухую пробирку не встряхивая.

13.1. Клинический анализ крови

        Кровь на клинический анализ берется из вены во флакон с трилоном в количестве 2 мл. После взятия кровь аккуратно перемешать с консервантом. При необходимости повторить отдельные гематоло­гические тесты, пациента направляют в лабораторию для взятия крови из пальца. Лаборант в отделении берет у пациента натощак кровь из пальца. Не рекомендуется взятие крови после физической нагрузки, после применения медикаментов, особенно при в/м или в/в введении их, после воздействия рентгеновских лучей и физиоте­рапевтических процедур. Повторные исследования необходимо про­изводить в одни и те же часы, т. к. морфологический состав крови подвержен колебаниям на протяжении суток. При невыполнении вы­шеуказанных правил результаты исследований будут несравнимы между собой и могут привести к ошибочному толкованию.

13.2. Кровь для определения группы и резус-фактора

        Из вены 5,0-6,0 мл. в сухую пробирку без предварительной под­готовки. Каждая пробирка с приклеенной этикеткой, на которой Ф., И., О., группа крови, Ph фактор, № истории болезни.

13.3. а) на С-реактивный белок

б) на ревматоидный фактор

в) для определения титра аитистрептолизина-0

        Натощак из вены в сухую пробирку 5,0 мл можно все в одну пробирку, но три разных направления.

13.4. Для определения титра антистрептокиназы

        Натощак 6,0-7,0 мл крови в пробирку, содержащую 5% раствор цитрата натрия (из расчета 0,1 мл. на 1 мл. крови).

13.5. Для определения антител к различным группам крови (у беременных)

        Также, как на группу крови и Ph-фактор. В сухую пробирку.

13.6. Для определения антител в ткани щитовидной железы

        Натощак в сухую пробирку 5,0 мл. крови.

13.7. Для определения Циркулирующих иммунных комплексов

        В течение 1 часа после забора кровь доставить в лабораторию. В сухую пробирку забрать 4,0 мл. крови из вены.

13.8. Для определения иммуноглобулинов классов LA и М

        Натощак в сухую пробирку 5,0 мл крови из вены. Кровь доста­вить в лабораторию в день забора.

13.9. Для определения Т и В лимфоцитов

        Натощак во флакон с консервантом забрать кровь из вены до метки на флаконе, аккуратно перемешать. Доставить обязательно в день забора. В направлении указать количество лейкоцитов и лимфоци­тов из последнего клинического анализа крови.

13.10. Посев крови на стерильность

        Берут у постели пациента или в перевязочной стерильным шпри­цем. Нельзя пользоваться шприцем со «стерильного стола», нельзя про­верять проходимость шприца и иглы воздухом, чтобы избежать по­падания микроорганизмов из воздуха. Посев на питательные среды не­обходимо проводить во время подъема температуры, в начале появле­ния лихорадки до начала антибактериального химиотерапевтического лечения или через 12-24 часа после последнего введения. Кожу над пун­ктируемой веной обрабатывают 70 град, спиртом, затем 5% настойкой йода, затем снова спиртом. Если у пациента стоит подключичный ка­тетер, можно воспользоваться им для получения крови. Для этого дают свободно стечь некоторому количеству крови в пробирку, затем на­бирают кровь в шприц. Посев крови осуществляется у постели пациен­та в две среды «Двойную» и «Среду для контроля стерильности» по 5 мл. в каждый флакон. Для этого предварительно снимается бумажный колпачок вместе с ватно-марлевой пробкой, а бумажный вкладыш про­калывается иглой и выпускается кровь. При посеве крови на второй флакон со средой часть крови должна остаться в шприце, что умень­шает риск загрязнения посева. Флаконы со средами выдаются баклабораторией и могут храниться в отделении до нужного момента в холо­дильнике при температуре + 4, + 6 градусов, перед посевом среды со­греваются при комнатной температуре. Засеянные среды хранятся при комнатной температуре, затем доставляются в лабораторию.

13.11 Кровь на гемокультуру (тифопаратифозную группу инфекций)

        Забор крови производится на высоте подъема температуры в лю­бое время суток на среду «Желчный бульон». Следует помнить, что бактериемия при брюшном тифе предполагается в первые 10-15 дней от начала заболевания. Кровь забирается с соблюдением правил асептики и у постели пациента засевается в питательную среду (5 мл., крови на 50 мл. среды). Содержимое флакона тщательно перемешивается и доставляется в баклабораторию. Если посев осуществлен после 15.00, он оставляется при комнатной температуре до утра и направляется в лабораторию.

13.12. Кровь на серологические исследования

1. РНГА с риккетсиозным диагностикумом.

2. РНГА с сальмонеллезным 0 комплексным фа-диагиостикумом.

3. РНГА с дизентерийными диагностикумами.

4. РНГА с псевдотуберкулезным и кишечноиерсениозным диаг­ностикумами.

5. Реакция Райта-Хеддельсона на бруцеллез.

        5-7 мл. крови из локтевой вены забирают в стерильную пробир­ку натощак, дважды через 10-14 дней (для получения парных сыво­роток). Это поможет определить фазу инфекционного процесса и степень иммунного ответа организма.

13.13. Кровь на коагулограмму

        Кровь берется до метки в пробирки , взятые в лаборатории накануне.

        При исследовании свертывающей и антисвертывающей систем крови (показатели коагулограммы) следует выполнить следующий порядок забора крови:

        1. Кровь брать строго натощак.

        2. Кожа над местом прокола обрабатывается спиртом (не эфиром!) Прокол производят после высыхания спирта.

        Желательно кровь брать без наложения жгута, т. к. перетяжка ко­нечности активирует свертывание крови, тромбоцитарный гемос­таз и особенно фибринолиз. При плохих венах допустимо кратков­ременное (лишь во время входа иглы в вену, не более 2-х минут) наложение слабой перетяжки - не более 30 мм ртутного столба. Пункция должна быть, по возможности, малотравматичной.

        Длительные поиски вены, как и очень медленный ток крови из иглы, снижают точность исследования. Кровь в пробирки, предва­рительно взятые в лаборатории, набирают свободным током, перемешивая ее с антикоагуляцитом покачиванием или легким встряхива­нием (без вспенивания). Интенсивное встряхивание и вспенивание усиливает гемолиз эритроцитов, что искажает многие параметры коагулограммы. Первые 5-6 капель крови выпускаются на тампон и для исследования не берутся, т. к. в них может быть заметная при­месь тканевого тромбопластина.

        3. При назначении нескольких исследований сначала берется кровь на коагулограмму, протромбированный индекс, фибриноген.

13.14. Кровь на фибриноген, протромбин

        Кровь берется до метки, в пробирки, накануне взятые в лаборато­рии, и аккуратно перемешивается. (Технология взятия крови, как 13.13).;

13.15. Кровь на холестерин, фракции липопротеидов

        Кровь берется в сухую пробирку, 3-5 мл. Рекомендуется предва­рительное голодание.

13.16. Кровь на билирубин, трансаминазу, К, Ма

        Не рекомендуется принимать аскорбиновую кислоту. Кровь бе­рется в сухую пробирку и доставляется в кол-ве 7-10 мл.

13.17. Кровь на вирусные гепатиты

        В сухую центрифужную пробирку забрать 5,0 мл. венозной кро­ви. Пробирку с кровью закрыть резиновой пробкой. К каждой про­бирке приложить направление. В направлении указать:

·          Ф.И.О. пациента,

·          отделение, палату,

·          дату забора крови,

·          диагноз.

13.18. Памятка по забору и доставке крови на СПИД

Забор крови

        1. В сухую центрифужную пробирку забрать 4-5 мл. венозной крови.

        2. Пробирки с кровью нужно пронумеровать. Номера на пробирках и направлениях должны совпадать. Пробирки закрываются ватно-марлевой или резиновой пробкой и устанавливаются в контей­нер с уплотнителем (вата, поролон).

        3. Категорически запрещается забор крови в пробирки с отбиты­ми краями.

        4. Работать с исследуемым материалом только в резиновых пер­чатках, все повреждения кожи на руках должны быть закрыты лей­копластырем или напальчником. Особое внимание следует обращать на условия забора крови, чтобы исключить заражение. Работать надо осторожно во избежание случайных уколов иглой, разбитой посудой.

        5. Кровь может храниться в холодильнике не более суток. Не подлежат доставке в лабораторию гемолизированная и проросшая кровь. Каждая пробирка маркируется, составляется направление в 2-х эк­земплярах.

Доставка крови

        Забранную кровь необходимо доставить в лабораторию в день забора с 8.30. до 10.00.

        1. Кровь доставляется в лабораторию в жестяном контейнере.

        2. Отдельно доставляется направление со сведениями об обсле­дуемых лицах.

Необходимо указать:

·          диагноз,

·          регистрационный номер,

·          номер истории болезни,

·          отделение, палату,

·          Ф., И., О. (полностью),

·          пол,

·          возраст,

·          домашний адрес (полностью),

·          код,

·          дату забора крови,

·          дату доставки материала,

·          фамилию лица, забравшего материал. Направления доставляются в 2-х экземплярах:

1 экземпляр - направление на каждого обследуемого,

2 экземпляр — общее направление, где списком перечислены сведения о всех обследуемых.

Укладка для забора крови на форму 50

1. Бикс.

2. Шприцы с иглами одноразовыми, не менее 2-х.

3. Чистые перчатки.

4. Стеклянные чистые, сухие пробирки с резиновыми пробками

5. Штатив.

6. Стерильные ватные тампоны.

7. 70 градусный этиловый спирт.

8. 1-2% водный раствор борной кислоты для закапывания в глаза.

9. 1-2% раствор проторгола для закапывания в нос.

10. 6% р-р перекиси водорода.

11. Лейкопластырь.

12. Флакон с сухим марганцово-кислым калием.

13.19. Забор крови на RW

Кровь берется в сухую пробирку 3-5 мл. В направлении указать:

·          ЛПУ, Ф., И., О. пациента,

·          отделение, палату,

·          дату забора крови,

·          диагноз.

13.20. Кровь на гормоны

Кровь берется в сухую пробирку 6-8 мл натощак. Доставляется в лабораторию в тот же день.

14. Порядок работы процедурной медсестры

с кабинетами и отделениями переливания крови

1. Выдача крови, кровезаменителей в плановом порядке по тре­бованию лечащего врача проводится с 9.00 до 11.00.

2. Заявки на кровь, компоненты крови, кровезаменители выпи­сываются на форменных аптечных бланках с указанием количества, Ф., И., О. пациента, диагноза, № истории болезни и доставляются в ОПК до 14.00, вместе с историей болезни.

3. В экстренных случаях требование на кровь, кровезаменители подписывает начмед и кровь получают в течение дня.

4. Кровь на операцию заказывает зав. отделением или лечащий врач, по заявке. Верхнюю часть требования заполняет лечащий врач или зав. отделением, нижнюю сотрудники ОПК.

При получении крови необходимо поставить число, название от­деления, операцию, фамилию сотрудника, получившего кровь.

15. Инфекционный контроль

Инфекционный контроль - это система эффективных профилак­тических и противоэпидемических мероприятий, направленных на предупреждение возникновения и распространения госпитальных инфекций, основанная на результатах эпидемической диагностики.

Целью инфекционного контроля являются снижение заболеваемо­сти, летальности и экономического ущерба от госпитальных инфек­ций. Госпитальная инфекция - это любые инфекционные заболева­ния, проявившиеся в условиях стационара. К госпитальным инфек­циям также относятся случаи инфицирования медицинских работни­ков ЛПУ, возникшие в результате их профессиональной деятельности. Требования к выполнению санитарно-противоэпидемического и стерилизационно-дезинфицирующего режимов регламентируются приказами МЗ СССР № 288/76, № 720/78, МЗ РФ № 170/94, ОСТом 42 21-2-85 и методическими указаниями по дезинфекции, предстерилизационной очистке и стерилизации изделий медицинского назначе­ния МУ-287-Ш от 30.12.98 г.

15.1. Основные требования к работе процедурной медсестры

В целях предупреждения инфицирования пациентов необходи­мо проводить все виды инъекций, строго соблюдая правила асепти­ки и антисептики. Для каждого пациента используется индивиду­альный стерильный шприц и игла. Все манипуляции процедурная медсестра проводит в стерильных перчатках. Для выполнения парантеральных вмешательств используется стерильная укладка, кото­рая состоит из лотка и стерильной пеленки.

Стерильная укладка готовится на 1 рабочую смену (б часов). Пин­цеты, корнцанги и другой медицинский инструментарий для захва­та стерильного материалам процедурных кабинетах хранят в сухом виде на стерильной поверхности (в лотке между двумя слоями сте­рильной пеленки). Замену использованных пинцетов и другого ин­струментария для захвата стерильного материала проводят как мож­но чаще.

Хранить стерильные изделия в растворе 90 градусного спирта не следует, так как спирт не оказывает стерилизующего действия и в нем могут выживать устойчивые формы микроорганизмов (споры), что может привести к вторичному обсеменению ранее простерилизованных изделий.

Использованные шприцы, иглы, катетеры, перчатки, системы для инфузионной терапии и переливания крови перед утилизацией под­вергают дезинфекции по одному из разрешенных режимов.

Лабораторная посуда для определения группы крови после ис­пользования должна подвергаться дезинфекции, предстерилизационной очистке и стерилизации, согласно инструкции МЗ РФ от 1991 г. По мерам профилактики распространения инфекционных заболе­ваний при работе в КДЛ ЛПУ и приказа МЗ РФ № 408 /89 г.

15.2. Дезинфекция, ПСО, общие положения

Дезинфекция, предстерилизационная очистка и стерилизация из­делий медицинского назначения (далее изделия) направлены на про­филактику внутрибольничных инфекций у пациентов и персонала лечебно-профилактических учреждений.

Дезинфекцию изделий проводят с целью уничтожения патогенных и условно-патогенных микроорганизмов-вирусов ( в том числе возбудителей парентеральных вирусов гепатитов, ВИЧ- инфекции), бактерий (включая микобактерии туберкулеза), грибов (включая гри­бы рода Кандида) - на изделиях медицинского назначения, в их кана­лах и полостях.

Дезинфекции подлежат все изделия после применения их у паци­ента. После дезинфекции изделия применяют по назначению или (при наличии показаний) подвергают предстерилизационной очистке и стерилизации. В качестве средств дезинфекции, предстерилизацион­ной очистки и стерилизации используют только разрешенные в уста­новленном порядке в Российской Федерации физические и химичес­кие средства.

При выборе средств следует учитывать рекомендации изготови­телей изделий, касающиеся воздействия конкретных средств (из числа разрешенных в нашей стране для данной цели) на материалы этих изделий. При проведении дезинфекции, предстерилизацион­ной очистки и стерилизации допускается использование только того оборудования (установки, моечные машины, стерилизаторы и др.), которое разрешено в установленном порядке к промышленному выпуску и применению (в случае импортного оборудования - раз­решенного к применению) в Российской Федерации.

Емкости с растворами дезинфицирующих, моющих, стерилизу­ющих средств должны быть снабжены крышками, иметь надпись с указанием названия средства, его концентрации, назначения, даты приготовления (для готовых к применению средств, разрешенных для многократного использования, указывают дату начала исполь­зования средства).

15.2.1. Дезинфекция физическими методами

1. Физический метод дезинфекции надежей, экологически чист и безопасен для персонала, поэтому в тех случаях, когда позволяют условия (оборудование, номенклатура изделий и т.д.) при проведении дезинфекции изделий предпочтение следует отдать этому методу.

2. Дезинфекцию с использованием физического метода выпол­няют:

·          способом кипячения в дистиллированной воде или в воде с до­бавлением натрия двууглекислого (сода пищевая);

·          паровым методом ( в паровом стерилизаторе - автоклаве);

·          воздушным методом (в воздушном стерилизаторе).

3. Дезинфекции способом кипячения подвергают изделия из стек­ла, металлов, термостойких полимерных материалов и резины. Пе­ред кипячением изделия очищают от органических загрязнений, промывая водопроводной водой. Отсчет времени дезинфекционной выдержки начинают с момента закипания воды.

4. Паровым методом дезинфицируют изделия из стекла, метал­лов, резины, латекса, термостойких полимерных материалов. Пред­варительная очистка изделий не требуется. Их складывают в стерилизационные коробки и помещают в паровой стерилизатор. Дезин­фекция осуществляется воздействием водяного насыщенного пара под избыточным давлением.

5. Дезинфекцию воздушным методом изделий из стекла, метал­лов, силиконовой резины проводят без упаковки в воздушных сте­рилизаторах. Этим методом можно дезинфицировать только изде­лия, не загрязненные кровью.

Таблица 1

15.2.2. Дезинфекция химическим методом

1. Дезинфекцию химических методом проводят способом погружения изделий в раствор в специальных емкостях из стекла, пластмасс или в покрытых эмалью без повреждений. Наиболее удобно применение специальных контейнеров в которых изделия размещают на специальных перфорированных решетках. Разъемные изделия дезинфицируют в разобранном виде. Каналы и полости изделий заполняют дезинфицирующим раствором. Для изделий и их частей, не соприкасающихся непосредственно с пациентом, может быть использован способ двукратного протирания салфеткой из бязи или марли, смочено в растворе дезинфицирующего вещества. Способом протирания не рекомендуется использовать средства, содержащие альдегиды (Глутарал, Глутарал-Н, Сайдекс, Гигасепт ФФ, Бианол, формалин и др.) а также Дезоксон-1 и Дезоксон-4 во избежаниепобочного токсичного эффекта.

2. Для дезинфекции изделий разрешены к применению дезинфи­цирующие средства отечественного и зарубежного производства из следующих основных химических групп: хлорсодержащие средства, средства на основе перекиси водорода, на основе спиртов, альдеги­дов катионных поверхностно-активных веществ.

3. Более щадящим действием по отношению к материалам, из которых изготавливаются медицинские изделия, обладают альдегидсодержащие средства: Глутарал, Глутарал-Н, Бианол, Сайдекс, Гигасепт ФФ, Лизоформин-3000, Дезаформ, Альдазан-2000, Секусепт-Форте и др. Эти средства рекомендованы для изделий из стекла, металлов, резин, по­лимерных материалов, в том числе термолабильных.

Недостатком многих средств из этой группы является их способ­ность фиксировать органические загрязнения на поверхности и в каналах изделий. Во избежание этого изделия необходимо отмыть от загрязнений с соблюдением противоэпидемических мер, а затем дезинфицировать, в соответствии методических указаний по при­менению средства.

4. Применение спирта этилового синтетического ректификован­ного рекомендовано только для дезинфекции инструментов из метал­лов. Для дезинфекции изделий не только из металлов, но и других материалов разрешены к применению средства на основе спиртов и катионных ПАВ: Гибитан, Велтосепт. Средства, содержащие спир­ты, также обладают свойством фиксировать загрязнения органичес­кого происхождения, что обусловливает необходимость предваритель­ного отмывания загрязненных изделий перед дезинфекцией с соблю­дением противоэпидемических мер.

5. Хлорсодержащие средства ( Хлорамин Б или ХБ, ДП-2, Присепт, Клорсепт и др.), а также большинство средств на основе пере­киси водорода ( перекись водорода с 0,5% моющего средства, Пероксимед, ПВК и др.) предназначены для дезинфекции изделий из коррозионностойких металлов, а также других материалов- резин, пластмасс, стекла. Для дезинфекции изделий медицинского назна­чения допускается применение перекиси водорода медицинской и технической ( марки А и Б).

6. Дезинфицирующие средства с моющим действием, такие как Пероксимед, нейтральные анолиты, Лизетол АФ, Виркон и другие могут быть использованы для дезинфекции изделий медицинскою назначения и предстерилизационной очистки на одном этапе обра­ботки. Дезинфекцию изделий химическим методом осуществляют одним из средств по режимам, представленных в таблице 2. Режи­мы дезинфекции даны в пяти вариантах:

1 (первая строка) - при вирусных гепатитах, ВИЧ- инфекции, энтеровирусных, ротавирусных инфекциях.

2. (вторая строка) - следует применять для предупреждения гнойпых заболеваний .кишечных и капельных инфекций бактериальной этиологии, острых респираторных вирусных инфекций (грипп, аде­новирусные заболевания и др.).

3. (третья строка) - при туберкулезе.

4. (четвертая строка) - при кандидозах.

5. (пятая строка) - при дерматофитиях. В тех случаях, когда в таблице приведен один вариант режима (средства КолдСпор, Деконекс Денталь ББ и др.), он распространяется на всех возбудителей.

6. При отсутствии обоснованных показаний к проведению де­зинфекции по режимам для инфекции бактериальной этиологии (исключая туберкулез) дезинфекцию проводят по режимам для вирусных инфекций.

Таблица 2

Дезинфекция химическим методом

15. 2. 3. Перечень дезинфекционных средств и

методических документов по их применению

Таблица 3

15.3. Предстерилизационная очистка

1. Предстерилизационную очистку изделий медицинского назна­чения осуществляют после их дезинфекции и последующего отмы­вания остатков дезинфицирующих средств проточной питьевой водой. Предстерилизационную очистку лигатурного шовного материа­ла (нити хирургические шелковые крученые, нити хирургические капроновые крученые, шнуры хирургические полиэфирные) в ЛПУ не проводят.

2. Для предстерилизационной очистки используют средства, ука­занные в таблице № 1, в том числе электрохимические активиро­ванные растворы (католиты, анолиты), вырабатываемые в диафрагменных электрохимических установках, разрешенных к промыш­ленному выпуску в установленном порядке.

Раствор, содержащий перекись водорода и моющее средство (Лотос, Лотос-автомат, Астра, Айна, Маричка, Прогресс), готовят в ус­ловиях ЛПУ, применяя перекись водорода медицинскую или техни­ческую (марки А и Б). Для снижения коррозионного действия моющих растворов, содержащих перекись водорода с моющим средством Лотос и Лотос-автомат, целесообразно использовать ингибитор кор­розии - 0,14% олеата натрия.

3. Предстерилизационную очистку проводят ручным или меха­низированным (с помощью специального оборудования) способом.

Предстерилизационную очистку ручным способом осуществля­ют в соответствии с таблицей 4, используя емкости из пластмасс, стекла или покрытых эмалью (без повреждений).

Методика проведения предстерилизационной очистки механизи­рованным способом должна соответствовать инструкции по эксп­луатации, прилагаемой к конкретному оборудованию.

4. При наличии у средства, наряду с моющими, также и антимик­робных свойств (в том числе обязательно в отношении возбудителей парентеральных вирусных гепатитов и ВИЧ-инфекции) предстери­лизационная очистка изделий на этапе замачивания или кипячения в растворе может быть совмещена с их дезинфекцией в соответствии с таблицами 3, 4, 5.

5. Разъемные изделия подвергают предстерилизационной очист­ке в разобранном виде.

При замачивании или кипячении в моющем растворе изделия пол­ностью погружают в раствор моющего средства, заполняя им кана­лы и полости изделий.

Мойку осуществляют с помощью ерша, ватно-марлевых тампо­нов, тканевых салфеток; каналы изделий промывают с помощью шприца. Использование ерша при очистке резиновых изделий не допускается.

15.3.1 Средства предстерилизационной очистки

Таблица 4

Примечание:

* Концентрация перекиси водорода, растворов средства «Пероксимед», а так же анолитов приведена по действующему веществу, остальных средств по препарату, концентрация средств «Дезэффект», «Векс-Сайд» дополнительно выражена соотношением долей концентрата средства и добавляемой воды.

** Электрохимически активированные растворы с рН от 5,5 до 8,4 в зависимости от типа анолита (нейтральный анолит, «нейт­ральный анолит АНК»), вырабатываемые в установках «СТЭЛ-МТ-Г», «СТЭЛ-4Н-60-ОГ», «СТЭЛ-4Н -60-02», «СТЭЛ-ЮН-120-ОГ» применяют без разведения. Конкретные концентрации анолита при­ведены в методических указаниях по применению растворов, выра­батываемых конкретными установками.

*** Электрохимически активированные растворы с рН от 9,0 до 12,0 вырабатываемые в установках «ЭХА-30», «СТЭЛ-ЮАК-120-01», «СТЭЛ- МТ-2», «УМЭМ», применяют без разведения.

15.3.2. Предстерилизациоиная очистка ручным способом

с применением замачивания в моющем растворе

Таблица 5

Примечания:

* Концентрация перекиси водорода, растворов средства «Пе­роксимед», а так же анодитов приведена по действующему веще­ству, остальных средств - по препарату, концентрация средств «Дезэффект» (Санифект-128) и «Векс-Сайд» дополнительно выражена соотношением долей концентрата средства и добавляемой воды.

** Температура раствора в процессе мойки не поддерживается.

*** Используемая концентрация рабочего раствора средству «Аламинол» зависит от конструктивных особенностей изделий, указана в методических указаниях по применению средства.

4* Время выдержки зависит от особенностей обрабатываемый изделий и указано в методических указаниях по применению данного средства.

5* При применении средства «Септодор-Форте» замачивание изделий проводят и после их предварительной очистки в этом же растворе.

6* При применении средства «Виркон» замачивание изделий в его 2% рабочем растворе проводят после предварительной очистки изделий от видимых загрязнений в 0,5% растворе этого же средства.

7* Время выдержки приведено в методических указаниях по применению католитов и анолитов, вырабатываемых конкретными установками.

8* В течение 1 мин. осуществляют мойку изделий средствами «Векс-Сайд» и «Септодор-Форте», а также мойку сложных изделий, имеющих каналы или замковые части, средствами «Бланизол», «Велтолен», «Виркон», «Пероксимед», «Септабик», «Септадор», «ИД-212», «Деконекс-50ФФ»; во всех остальных случаях мойку каждого изделия осуществляют в течение 0,5 минут.

15. 3. 3. Предстерилизационная очистка ручным способом с применением кипячения

Для предстерилизационной очистки растворы средств «Биолот», «Биолот-1», «Бланизол», «Пироксимед», «Септодор», «Векс-Сайд», а также средство «Гротанат Борербад», католиты и анолиты исполь­зуют однократно; растворы средств «ЛУЧ», «ЗИФА», «Дюльбак ДТБ/ Л» (Дюльбак-Макси) - двукратно.

Растворы остальных средств допускается применять до загряз­нения (появление первых признаков изменения внешнего вида), но не более чем в течение времени, указанного в методическом доку­менте по применению конкретного средства.

При применении растворов, содержащих перекись водорода с мо­ющим средством, растворов моющих средств «Лотос», «Лотос-ав­томат», «Астра», «Айна», «Маричка», «Прогресс», а также натрия двууглекислого, неизмененный раствор можно использовать до шести раз в течение рабочей смены.

Сушку изделий из натурального латекса проводят в соответствий с режимом, указанным в инструкциях по применению этих изделий.

15. 3. 4. Дезинфекция и предстерилизацнонная очистка,

совмещенные в одном процессе

Таблица 6

Примечания:

*      Концентрация растворов средства «Пероксимед», а также адонитов приведена по действующему веществу, остальных средств по препарату, концентрация средств «Дезэффект» (Санифект-128) и «Векс-Сайд» дополнительно выражена соотношением долей концентрата средства и добавляемой воды.

** Мойку каждого изделия осуществляют с помощью ерша, ватно-марлевого тампона или тканевой салфетки; каналы изделий промывают с помощью шприца. В течение одной минуты осуществляют мойку сложных изделий, имеющих каналы или замковые час­ти, средствами «Бланизол Векс-Сайд», «Велтолен», «Виркон», «Пе­роксимед», «Септабик», «Септодор», «Септодор- Форте», во всех остальных случаях мойку каждого изделия осуществляют в тече­ние, 0,5 минут При применении ратворов моющих средств («Лотос», «Лотос-автомат», «Астра», «Айна», «Маричка», «Прогресс»), а так же натрия двууглекислого, мойку изделий после кипячения осуществляют в процессе их ополаскивания проточной питьевой водой.

*** Используемая концентрация рабочего раствора средства «Аламинол» зависит от конструктивных особенностей изделий.

4* Время обработки эндоскопов и медицинских инструментов к гибким эндоскопам на этапах мойки в растворах средств и ополас­кивания проточной водой указано в методических указаниях по при­менению конкретного средства.

5* Температуру раствора в процессе мойки не поддерживают.

б* Время замачивания 120 минут указано для изделий из резин,

7* При применении средства «Септодор-Форте» замачивание изделий проводят после предварительной их очистки в этом же растворе.

8* При применении средства «Виркон» замачивание изделий в его 2% рабочем растворе проводят после предварительной очистки изделий от видимых загрязнений в 0,5%растворе этого же средства.

9* Электрохимически активированные растворы с рН от 5,5 до 8,4 в зависимости от типа анонита (нейтральный анолит АНК, ней­тральный анолит), вырабатываемые в установках «СТЭЛ-МТ-Г», «СТЭЛ-4Н-60-01», «СТЭЛ-4Н-60-02», «СТЭЛ-10Н-120-ОГ», приме­няют без разведения. Конкретные концентрации анолитов и время выдержки приведены в методических указаниях по применению ра­створов, вырабатываемых конкретными установками.

15.3. 5. Журнал учета качества предстерилизационной обработки

Начат «          »              200          г.    Окончен «      »              200          г.

Форма М 366/у. Утверждено МЗ СССР от 04.10.80 г. № 1030.

15.4. Стерилизация

Стерилизацию изделий медицинского назначения проводят с целью умерщвления на них всех патогенных и непатогенных мик­роорганизмов, в том числе их споровых форм.

1. Стерилизацию осуществляют физическими (паровой, воздуш­ный, в среде нагретых шариков) и химическими (применение ра­створов химических средств, газовый) методами, указанными в таб­лицах п.п.15.1-15.3. Выбор адекватного метода стерилизации зависит от особенностей стерилизуемых изделий.

2. При стерилизации паровым, воздушным и газовыми методами изделия, как правило, стерилизуют упакованными в стерилизационные упаковочные материалы; при паровом методе, кроме того, ис­пользуют стерилизационные коробки без фильтров и с фильтрами.

Могут быть использованы только упаковочные материалы, раз­решенные к применению в Российской Федерации.

При воздушном методе, а также в отдельных случаях при паро­вом и газовом методах, допускается стерилизация инструментов в неупакованном виде (в открытых лотках).

15.4.1. Паровой метод стерилизации

1. При паровом методе стерилизации стерилизующим средством является водяной насыщенный пар под избыточным давлением, температурой 120-132 градуса С; стерилизацию осуществляют в паровых стерилизаторах (автоклавах).

2. Паровым методом стерилизуют общие хирургические и спе­циальные инструменты, детали приборов и аппаратов из коррозионно-стойких материалов, стекла, шприцы с пометкой 200°С, хирургическое белье, перевязочный и шовный материал, изделия из резины (перчатки, трубки, катетеры, зонды и т. д.), латекса, отдельных видов пластмасс.

3. Резиновые перчатки перед стерилизацией пересыпают внутри и снаружи тальком для предохранения от склеивания. Между перчат­ками прокладывают марлю или бумагу, каждую пару перчаток завора­чивают отдельно в марлю или бумагу и в таком виде помещают в стерилизационную коробку или в другую упаковку. В целях уменьшения неблагоприятного воздействия пара резиновые перчатки, как и другие изделия из резины, стерилизуют при температуре 120-122 градуса С.

Стерилизация паровым методом (Водяной насыщенный пар под избыточным давлением)

15. 4. 2. Воздушный метод стерилизации

1. При воздушном методе стерилизации стерилизующим средством является сухой горячий воздух температурой 160° и 180° С, стерилизацию осуществляют в воздушных стерилизаторах.

2. Воздушным методом стерилизуют хирургические, гинекологические, стоматологические инструменты, детали приборов и аппаратов, в том числе изготовленные из корозионнонестойких материалов, шприцы с пометкой 200°С, инъекционные иглы, изделия из силиконовой резины.

Стерилизация воздушным методом (сухой горячий воздух)

3. Перед стерилизацией воздушным методом изделия после предстерилизационной очистки обязательно высушивают в сушильном шкафу при температуре 85 град. С до исчезновения видимой влаги.

4. Качество стерилизации воздушным методом зависит от равно­мерности распределения горячего воздуха в стерилизационной ка­мере, что достигается правильной загрузкой стерилизатора. Изде­лия загружают в таком количестве, которое допускает свободную подачу воздуха к стерилизуемому изделию.

Примечания:

** Конкретные виды зарубежных упаковочных материалов однократного применения, рекомендованные для стерилизации воздуш­ным методом, а также сроки сохранения в них стерильности изделий указаны в методических документах по применению упаковок.

Срок сохранения стерильности изделий, простерилизованных в бумаге мешочной влагопрочной, бумаге крепировапной - 20 суток.

Кратность использования бумаги мешочной влагопрочной бумаги крепированной – 2 раза, бумаги упаковочной высокопрочной — 3 раза.

Изделия, простерилизованные без упаковки, помещают на «сте­рильный стол» и используют в течение одной рабочей смены (6 часов).

15.4.3. Стерилизация растворами химических средств

1. Стерилизация изделий растворами химических средств явля­ется вспомогательным методом, поскольку изделия нельзя простерилизовать в упаковке, а по окончании стерилизации их необходи­мо промыть стерильной жидкостью (питьевая вода, 0,9% раствор натрия хлорида), что при нарушении правил асептики может приве­сти к вторичному обсеменению простерилизованных изделий мик­роорганизмами.

Данный метод следует применять для стерилизации изделий, в конструкцию которых входят термолабильные материалы, то есть в тех случаях когда особенности материалов изделий не позволяют использовать другие официально рекомендуемые методы стерилизации. Конструкция изделия должна позволять стерилизовать его растворами химических средств. При этом необходим хороший доступ стерилизующего средства и промывной жидкости ко всем сте­рилизуемым поверхностям изделия.

2. Для стерилизации растворами химических средств использу­ют средства, указанные в таблице № 7, в том числе электрохимичес­ки активированные растворы, вырабатываемые в диафрагменных электрохимических установках типа «СТЭЛ», а также вырабатыва­емые другими установками, разрешенные к выпуску, согласно ин­структивно-методическим документам, утвержденным в установлен­ном порядке в Российской Федерации.

3. При стерилизации растворами химических средств использу­ют стерильные емкости из стекла, металлов, термостойких пластмасс, выдерживающих стерилизацию паровым методом или покры­тые эмалью (эмаль без повреждений).

4. Температура растворов, за исключением специальных режи­мов применения перекиси водорода и средства «Лизоформин-3000», должна составлять не менее 20 градусов С для альдегидосодержащих средств и не менее 18 градусов С для остальных средств.

5. Стерилизацию проводят при полном погружении изделий в ра­створ, свободно их раскладывая. При большой длине изделия его
укладывают по спирали. Разъемные изделия стерилизуют в разоб­ранном виде. Каналы и полости заполняют раствором.

6. Во избежание разбавления рабочих растворов, используемых для стерилизации, погружаемые в них изделия должны быть су­хими.

7. После стерилизации все манипуляции проводят, строго соблю­дая правила асептики. Изделия извлекают из раствора с помощью стерильных пинцетов (корнцангов), удаляют раствор из каналов и полостей, а затем промывают в стерильной жидкости, налитой в сте­рильные емкости, согласно рекомендациям методического документа по применению конкретного средства. При каждом переносе из од­ной емкости в другую освобождение каналов и полостей и их за­полнение свежей жидкостью осуществляют с помощью стерильно­го шприца, пипетки, или иного приспособления.

8. Промытые стерильные изделия после удаления остатков жид­кости из каналов и полостей используют сразу по назначению или помещают (с помощью стерильных пинцетов, корнцангов) на хра­нение в стерильную стерилизационную коробку, выложенную сте­рильной простыней, на срок не более 3 суток.

Стерилизация растворами химических средств

Таблица 7

Примечания:

* Концентрация растворов средств «Бианол», «Лизоформин-3000», «КолдСпор», «Гигасепт ФФ» приведена по препарату, средства «Первомур» — по суммарному содержанию 30-33% перекиси водорода и 100% муравьиной кислоты, растворов остальных средств - по действую­щему веществу.

** Допускается использование только медицинской перекиси водо­рода.

*** Температура раствора в момент погружения в него изделий, в процессе стерилизации указанную температуру не поддерживают.

*4 Электрохимически активированные растворы с рН от 2.0 до 8,4 в зависимости от типа анолита («кислый анолит», «нейтральный анолит», «нейтральный анолит АНК»), вырабатываемые в установ­ках «ЭХА-30», «СТЭЛ-МТ-1», «СТЭЛ-МТ-2». «СТЭЛ-4Н-60-01», «СТЭЛ-4Н-60-02», «СТЭЛ-ЮАК-120-OI», «СТЭЛ-ЮН-120-О». Аноли­ты используют без разведения Конкретные режимы стерилизации приведены в методических указаниях по применению растворов, вы­рабатываемых конкретными установками.

15.5. Обработка игл для рефлексотерапии

Письмо зам.гп.госуд.санит.врача РФ Ш6РЦ/1830от 21.09.1992 г.

В соответствии с ОСТ 25.1-005-87 «Устойчивость медиц. металлических инструментов к средствам дезинфекции, прелстерилизационной очистке и стерилизации, рекомендованным ОСТом 42-21 -2 85», а также игл из серебра или сплавов серебра.

ДЕЗИНФЕКЦИЯ - погружение в 70 гр. раствор спирт на 90 мин;

ПРЕДСТЕРИЛИЗАЦИОННАЯ ОЧИСТКА - по ОСТУ 42-21-2-85 с использованием CMC «Биолот» или CMC «Лотоса» с переки­сью водорода.

СТЕРИЛИЗАЦИЯ - паровой, воздушный или химический метод по ОСТ-42-21-2-85

Обработку игл из серебра и платины проводить согласно ОСТ-42-21-2-85.

Иглы из серебра и сплавов серебра дезинфицируются спиртом предстерилизационпая очистка по ОСТ-42-21-2-85. Стерилизация только воздушным методом.

15. 6. Обработка перчаток

1. Дезинфекция перчаток проводится одним из способов:

а)     погружение в 3% р-р хлорамина на 60 мин., затем прополаскивание под проточной водой и высушивание.

б)    погружение в 6% р-р перекиси водорода на 60 мин., прополас­кивание в проточной воде и высушивание.

в)     погружение в 0,5% р-р CMC с 6% р-ром перекиси водорода на 60 мин., прополаскивание в проточной воде и высушивание.

г)     погружение в 0,03% р-р нейтрального анолита на 60 минут, прополаскивание в проточной воде и высушивание.

2. Стерилизация перчаток.

Перед стерилизацией перчатки подвергают предстерилизационной очистке по ОСТу 42-21-2-85. Стерилизацию проводят одним из способов:

а) Паровой метод стерилизации водяным насыщенным паром под повышенным давлением в паровом стерилизаторе автоклаве. Для этого перчатки внутри и снаружи пересыпают тальком (предварительно тщательно высушив), каждую перчатку перекладывают бя­зевой салфеткой, затем каждую пару заворачивают отдельно в пе­ленку или бязевый мешочек и в таком виде закладывают в стерилизационные коробки (биксы). Стерилизуют при 1-м режиме t 20°C, 1,1 атм. в течение 45 минут. Химконтроль: бензойная кислота, ИС на 120° С.

Приказ МЗ СССР № 720 от 31.07.78 г

Приказ МЗ СССР№ 408 от 12.07.89 г

МЗ РФ МУ 287-113 от 30.12.98 г

15. 7. Дезинфекция помещений, предметов обстановки

2-кратное протирание ветошью, смоченной в р-ре:

1)  хлорамин Б - 1% р-р;

2) перекись водорода 3% р-р с моющим средством;

3) лизоформин 3000, лизоформин-специаль, амоцид.

Обработка ветоши.

1. Погружение в один из р-ров на 60 мин. перед использованием.

а)  хлорамин Б 1 % р-р;

б)  гипохлорид Са 0,5% р-р.

2. Кипячение в 2% содовом р-ре - 15 мин.

3. Кипячение в дистиллированной воде - 30 мин.

4. Лизоформин-специаль 2% - 4 часа.

Приказ МЗ СССР № 408 от 12.07.89 г..

15. 8. Порядок проведения текущей уборки

1. Влажная уборка процедурного кабинета проводится не менее 2 раз в сутки, при необходимости чаще: утром перед началом рабоче­го дня и в конце  рабочей смены. Влажную уборку всегда необходимо сочетать с дезинфекцией и бактерицидным облучением помещения. Для дезинфекции могут быть использованы 1 % р-р хлорамина с до­бавлением 0,5% р-р моющего средства, 1,5% р-р лизоформина-специаль, 1,5% р-р амоцида, р-р нейтрального анолита согласно методи­ческих указаний к раствору.

2. Медсестра или санитарка для уборки одевает халат и перчат­ки. В специальную емкость наливается дезраствор и закладывает­ся чистая ветошь для  обработки поверхностей. Протираются все поверхности двукратно с интервалом 15 мин. в строгой последова­тельности — стол для стерильного материала, шкафы для стериль­ных растворов, оборудования, манипуляционные столы, стулья, ку­шетки для больных.

3. Для уборки используется специально выделенный уборочный инвентарь, имеющий четкую маркировку с указанием помещения, вида уборочных работ и специальное место хранения.

4.. После влажной уборки включаются бактерицидные потолочные или настенные облучатели на 60 минут, после чего проветривается по­мещение.

5. Уборочный инвентарь после использования подвергается де­зинфекции.

15. 9. Порядок проведения генеральной уборки

Генеральная уборка проводится один раз в неделю. В помещени­ях предварительно проводят уборку с применением растворов мою­щих средств для удаления механических и других загрязнений с целью более эффективного воздействия на обрабатываемые повер­хности дезинфицирующего средства. Затем помещение (пол, сте­ны), оборудование протирают ветошью, обильно смоченной одним из дезрастворов: 6% раствором перекиси водорода с 0,5% моющего средства, 5% раствором хлорамина, 1% активированным раствором хлорамина, 0,75% раствором Лизоформина-3000, 3% раствором Амоцида, 0,5% раствором Бионола из расчета 200 мл. кв.м обраба­тываемой поверхности. При применении растворов перекиси водорода и хлорамина возможно использование для орошения поверх­ностей распыливающей аппаратуры

Время дезинфекционной выдержки 60 минут. После экспозиции поверхность протирают стерильной ветошью. После дезинфекции, помещение облучают ультрафиолетовым светом (прямым или отраженным), включая настенные и потолочные бактерицидные облу­чатели ОБН-200 или ОБН-350 один облучатель на 30 куб.м помещения, ОБН-150 или ОБН-300 на 60 куб. м на 2 часа с последующим проветриванием. Персонал при проведении генеральной уборки использует чистый халат, обувь, ватно-марлевую маску, клеенчатый фартук, перчатки.

Генеральная уборка проводится по графику, утвержденному зав. отделением. Ответственным лицом за проведение генеральной уборки является старшая медицинская сестра отделения.

15.10. Перечень инструктивно-методических документов,

отражающих вопросы дезинфекции, предстерилизационной очистки

и стерилизации изделий медицинского назначения

1. ОСТ 42-21-2-85 «Стерилизация и дезинфекция изделий медицинского назначения. Методы, средства, режимы».

2. Приказ Минздрава СССР от 12 июля 1989 г. № 408 «О мерах по снижению заболеваемости вирусными гепатитами в стране».

3. Приказ Минздрава России от 16 июня 1997 г. № 184 «Об утверждении методических указаний по очистке, дезинфекции и стерилизации эндоскопов и инструментов к ним, используемых в лечебно-профилактических учреждениях»

4. Методические указания по классификации очагов туберкулезной инфекции, проведению и контролю качества дезинфекционных мероприятий при туберкулезе МЗ СССР (JV» 10-8/39 от 04.05.79 г.)

5. Методические рекомендации по дезинфекции, предстерилизационной очистке и стерилизации медицинских инструментов к гибким эндоскопам МЗ СССР(№ 28-6/3 от 09.02.88 г.).

6. Методические рекомендации по очистке, дезинфекции и сте­рилизации эндоскопов (МЗ СССР № 15-6/33 от 17.07.90 г.).

7. Методические рекомендации по стерилизации лигатурного шов­ного материала в лечебно-профилактических учреждениях (МЗ СССР № 15-6/34 от 19.07.90 г.).

8. Методические указания по контролю работы паровых и воз­душных стерилизаторов МЗ СССР (№ 15/6-5 от 28.02.91 г.).

9. Методические указания по применению озона, вырабатывае­мого в стерилизаторе озоновом СО-01-СП6, для стерилизации ме­дицинских инструментов МЗ РФ(№МУ-135-113 от 31.07.97 г.).

10. Методические рекомендации по стерилизации аппаратов ис­кусственного кровообращения газообразной окисью этилена МЗ СССР (№ 1013-73 от 26.03.72 г.).

11. Методические указания по применению медицинских упако­вочных материалов корпорации «Рексам» (Великобритания) МЗ РФ (№ МУ-204-113 от 29.12.97 г.).

12. Методические указания по применению медицинских упако­вочных материалов «Стерикинг» фирмы «Випак Медикал» (Фин­ляндия) МЗ РФ (№ МУ-157-ПЗ от 10.08.98 г.).

13. Инструкция по применению индикаторов стерилизации од­норазового применения ИС-120, ИС-132, ИС-160, ИС-180 МЗ РФ (№ 154,004.98 ИП от 18.02.98 г.).

14. Методические указания по дезинфекции, ПСО и стерилиза­ции изделий медицинского назначения МЗ РФ (МУ-287-113 от 30.12.98 г.).

содержание   ..  1  2  3  4  5  6  7  8    ..