Общая хирургия домашних животных (Ливков Б.М.) - часть 28

Антиретикулярная цитотоксическая сыворотка

Антиретикулярную цитотоксическую сыворотку (АЦС) академика  А. А. Богомольца

получают   посредством   гипориммунизации   лошади   селезенкой   кролика   или   путем
гипериммунизации   кролика   селезенкой   лошади   (А.   В.  Озеров).   Ее   выпускают   в   равных
частях с консервантом, в ампулах объемом 1 мл.

Антиретикулярная   цитотоксическая   сыворотка   дает   возможность   повысить   защитные

силы   организма,   его   сопротивляемость   инфекции   путем   непосредственной   стимуляции
защитной,   трофической   и   пластической   функций  ретикуло-эндотелиальной   системы   ткани.
АЦС не оказывает прямого действия на возбудителей инфекции и выделяемые ими токсины.

Под   влиянием   АЦС   усиливается   процесс   превращения   ретикулоцитов   лимфатических

синусов селезенки и лимфатических узлов в гистиоцитарные элементы, улучшается состояние
гистиопаренхиматозного   барьера,   повышается   образование   в   организме   антител   и
фагоцитарная   активность   лейкоцитов,  увеличивается   количество   эритроцитов   и
гемоглобина.

Согласно   учению   И.   П.   Павлова   о   нервизме,   ретикулоэндотелиальная  система

осуществляет   свое   действие   опосредованно   через   центральную   нервную   систему.   Таким
образом, фагоцитарная и другие функции ретикулоэндотелиальной системы, которой раньше
ошибочно придавалось ведущее  значение в жизнедеятельности и резистентности организма,
зависят от высшей нервной деятельности.

Показания.  Применение   АЦС   показано   во   всех   случаях,   когда   организм  располагает

резервными силами и в состоянии усилить под действием АЦС свои защитные, пластические
и трофические функции. Наш личный опыт показал, что АЦС является исключительным по
эффективности   средством   ускорения   заживления   у   лошадей   переломов,   изъязвлений
воспалившихся и вяло гранулирующих ран.

Способ   употребления.  Содержимое   одной   ампулы   АЦС   разбавляют   десятикратным

количеством   изотонического   раствора   хлорида   натрия   и   вводят   подкожно.   Инъекции
повторяют каждые 4 дня; для второй инъекции берут полторы ампулы, а для третьей две. Если
нет должного эффекта, можно провести через 10—12 дней повторный курс лечения.

Эффект.  Клинические   наблюдения   показали,   что   антиретикулярная   цитотоксическая

сыворотка,   изготовленная   профессором   Озеровым,   ускоряет   отторжение   некротических
тканей и рост здоровых грануляций, стимулирует процессы рубцевания и эпидермизации ран и
изъязвлений. Количество  гнойного экссудата  уменьшается.  Воспалительные отеки исчезают.
Мелкоклеточные   инфильтраты   постепенно   рассасываются.   Исследования   отпечатков
раневой   поверхности   свидетельствуют   о   том,   что   после   применения   АЦС   резко
повышается фагоцитоз бактерий. Количество полибластов увеличивается до 20 в поле зрения.
Фагоцитированные   микробы   подвергаются  бактериолизу;   нефагированные   микробы
окрашиваются   бледнее,   а   затем  исчезают.   Особенно   ярко   выражена   терапевтическая
активность АЦС у лошадей при открытых переломах. Как показывают рентгенограммы, уже
через 2 недели начинается образование костной мозоли, а в течение 45 дней заканчивается ее
формирование.

АЦС можно применять одновременно с бактерио-фагосульфаниламидами, антибиотиками и

новокаином.   АЦС   в   сочетании   со   средствами   причинной  терапии   способствует   успеху
лечения.

Противопоказания.  Введение   АЦС   противопоказано   при   моноцитопении  в   крови   и

отсутствии клеток ретикулоэндотелиалыюй системы в отпечатках раневой поверхности.

Тканевая терапия

Она   представляет   собой   имплантацию   консервированных   тканей;   впервые   была

предложена в 1933 г. академиком В. П. Филатовым.

Показаниями для тканевой терапии являются вяло заживающие раны, язвы, хронические

инфильтраты   и   пролифераты,   рубцовые   контрактуры,   стриктуры,   гипертрофированные   и

наклонные к изъязвлению рубцы, хронические заболевания кожи и периферических нервов —
невриты и радикулиты, а также глазные заболевания — кератиты, атрофии зрительных нервов,
хориоретиниты и пр.

Материалом для тканевой терапии могут быть гомогенные и гетероген ные ткани: кожа и

внутренние органы, брюшина и сальник, околоплодные оболочки, биологические жидкости—
водянистая влага глаза и стекловидное тело, тресковый рыбий жир, а также листья растений
столетника (алое), подорожника, агавы и т. д.

Тканевая   терапия   может   быть   осуществлена   двумя   способами:   подсадкой

консервированных   тканей   на   холоду   (способ   В.   П.   Филатова)   и   подсад кой   тканей,
консервированных химическими средствами (способ Н. И. Краузе).

С п о с о б   В. П.  Ф и л а т о в а .   Кусочек ткани (органа) кладут в стерильную   банку   с

притертой пробкой и консервируют на льду в течение  8—10 дней, а затем имплантируют
больному   через   разрез   кожи   в   подкожный  карман   (у   животных   —   на   шее   или   грудной
стенке) и закрывают кожную рану двумя стежками узлового шва. Биологические жидкости и
экстракты листьев растений вводят также подкожно шприцем.

Тканевая  терапия   инъекциями   экстракта   консервированных   листьев  агавы.   Листья

агавы завертывают в черную бумагу и хранят в темном месте  при температуре 5—8° выше
нуля в течение 15—30 суток. Затем нарезанные кусочки листа толщиной 3—4 мм и размером6 X
7мм   кладут   в   колбу,   добавляют  дистиллированной   воды   в   соотношении   1   :   20   (по   весу),
настаивают 2—3 часа, а потом кипятят 30—40 минут, после чего кусочки агавы растирают в
ступке. Обмыв ступку жидкостью из колбы, кипятят раствор снова 2 минуты и фильтруют
через марлю (фильтровальную бумагу), разливают в стерильные ампулы и стерилизуют их в
автоклаве при температуре 120° один час. Ампулы хранят в темном прохладном месте.

А. Г. Хорошина наблюдала положительные результаты после инъекций экстракта агавы в

подкожную клетчатку при лейкомах, ожогах роговицы известью и бельмах.

С п о с о б   Н.И.  К р а у з е .   Кусочки консервируемой ткани погружают  в стеклянную с

притертой   пробкой   широкогорлую   стерильную   банку   с   2   %-ным  свежеприготовленным
раствором хлорацида. Этот раствор меняют ежедневно в течение первых 2 суток, а затем
через   каждые   2   дня.   Через   5—6  суток   консервации   ткань   можно   использовать   для
имплантации.   За   5—10  минут   до   употребления   консервированную   ткань   погружают   в
изотонический   раствор   хлорида   натрия,   после   чего   ее   кладут   в   четырехслойную   марлевую
салфетку и отжимают излишек влаги.

Имплантируют   в   области   шеи   (П.   Ф.   Симбирцев)   или   вблизи   места   поражения   через

кожный   разрез   в   искусственно   образованный   кожный   карман.   Кожную   рану   закрывают
наглухо 2—3 стежками узловатого шва, а затем накладывают коллодийную повязку.

Неиспользованная консервированная ткань, сохранявшаяся в том же  растворе хлорацида

при   комнатной   температуре   в   темном   месте,   может   быть   использована   для   имплантации   в
течение 20—25 дней. За сутки до имплантации рекомендуется сменить раствор хлорацида.

Повторную имплантацию в случае необходимости производят через 15 — 20 дней (П. Ф.

Симбирцев) во вновь образованные подкожные карманы.

В   хирургической   клинике   Московской   ветеринарной   академии   Симбирцев   с   успехом

применял у лошадей для тканевой терапии кусочки кожи весом до 10 г, рубцовую ткань —  до
12 г, печень, тестикул — до 5 г и селезенку — до 3 г.

При одновременной имплантации разнородных тканей делают два подкожных кар мана: в

один из них имплантируют ткани паренхиматозных органов, а в другой — кожу  и рубцовую
ткань.   Общий   вес   имплантируемых   тканей   в   этих   случаях   не   должен   превы шать   12   г
(Симбирцев). После имплантации наблюдается незначительная местная реакция, исчезающая
через 3—5 дней. Общая реакция отсутствует.

Наши   и   П.   Ф.   Симбирцева   наблюдения   показали,   что   имплантированный,

консервированный по Краузе кусочек кожи, взятый от другой лошади или от той, которой
проводится имплантация, постепенно рассасывается без нагноения. Кожная рана заживает по

первичному натяжению.

Другой   способ.   Консервированную   хлорацидом   ткань   трансплан тируют

непосредственно   на   язву   или   вяло   гранулирующую   рану.   Предварительно   обрабатывают
кожу   по   окружности   дефекта.   Дефект   орошают  в   продолжение   3—5   минут   2%-ным
раствором   хлорацида,   а   затем   высушивают   стерильной   марлей.   Соответственно   размерам
дефекта   выкраивают   лоскут   из   консервированной   ткани   и,   легко   надавливая   посредством
марлевых тампонов, прилаживают его к гранулирующей поверхности, а затем накладывают
повязку. Через 5—7 дней сменяют повязку и консервированную ткань.

Вместо   хлорацида   можно   употреблять   для   консервирования   тканей  2%-ный   раствор

хлорамина; замена хлорацида риванолом вызывает нагноение на месте пересадки.

Метод   подсадки   консервированной   ткани   по   В.   П.   Филатову   нередко   дает

положительные результаты там, где другие способы лечения оказываются бесполезными.

Существенного различия в эффективности тканевой терапии по методу  акад. Филатова и

проф.   Краузе   нет.   Косяков   отмечает,   что   самый   раствор   хлорацида   является   достаточно
эффективным   заменителем   тканей,   применяемых  для   имплантаций   при   различных
хронических патологических процессах.

Тканевую   терапию   можно   комбинировать   с   применением   пенициллина  и   витаминов

(Филатов).

Механизм  действия тканевой терапии точно не выяснен. Полагают   (В. П. Филатов и

др.),   что   консервированные   на   холоду   ткани,   лишенные  источников   кровоснабжения   и
иннервации,   отвечают   на   угнетающие   их  условия   существования   образованием
стимуляторов   биохимических   процессов   —   так   называемых   факторов   консервации   или
веществ сопротивления, а по П. И. Краузе и др. — факторов протеолиза. Эти вещества,
попадая  в   общий   ток   крови   донора,   стимулируют,   по   мере   рассасывания   трансплан тата,
регенеративные   и   репаративные   процессы   и   оказывают   влияние   на   нервнотрофические
компоненты   патологического   процесса.   Посредством   факторов   протеолиза   происходит
размягчение и рассасывание патологических клеточных и тканевых образований, почему эти
факторы протеолиза называют также факторами оздоровления.

Обработанная  хлорацидом  трансплантированная  ткань  служит  хоро шим питательным

материалом, «подкормкой» (Краузе) для грануляций и кожного эпителия. Наличие хлорацида
в   консервированной   ткани   понижает   жизнедеятельность   микробов   и   ускоряет   процессы
аутолиза   (Краузе   и   др.),  изменяет   активную   реакцию   среды   в   кислотную   сторону   и
тканевой обмен.

Нервная система при тканевой терапии играет такую же ведущую роль,  как при других

методах   лечения.   Многие   исследователи   полагают,   что   лечебная   эффективность   тканевой
терапии   является   результатом   возникающего  в   коре   полушарий   головного   мозга
охранительного   торможения,   которое  и влияет благотворно на воспалительный процесс в
организме.   Как   гетерогенные,   так   и   изогенные   тканевые   имплантаты   действуют   на   весь
организм в основном рефлекторным путем.

Под действием тканевой терапии улучшается трофика тканей — повышается обмен веществ

и   ферментативная   деятельность   органов   и   тканей;   активируются   защитные   функции,
усиливается   сопротивляемость   организма   инфекции,   увеличивается   активность   клеток
(полибластов и макрофагов) ретикулоэндотелиальной системы  и нормализуется лейкоцитоз,
возрастает   количество  НЬ   и   эритроцитов,   замедляется   РОЭ,   стимулируется   образование
агглютининов (Е. С. Шулюмова, П. Ф. Симбирцев).

Тканевые   имплантаты   обладают   некоторой   видовой   и   органоидной   специфичностью,

вследствие чего перестройка общей реактивности организма  животного бывает неодинаковой.
Например,   имплантация   ткани   гетерогенного  семенника   снижает   кровяное   давление   у
подопытного животного, а имплантация гетерогенного кусочка кожи кровяного давления не
изменяет (Улович).

Исчезновение в имплантированной ткани продуктов протеолитического расщепления —

факторов протеолиза  — сопровождается  замедлением  процессов регенерации у реципиента,

что служит основанием для повторных имплантаций.

Тканевая терапия наиболее эффективна при заболеваниях с явлениями гиперемии, так как

имплантированный   кусочек   ткани   оказывает   десенсибилизирующее   действие,   рефлекторно
вызывая в организме повышение тормозных процессов в центральной нервной системе.

Тканевая   терапия   противопоказана   при   остро   гнойных   закрытых   и   открытых

воспалительных процессах с омертвением тканей и выделением большого количества гноя, а
также   при   хронических   процессах   с   мощным   напластованием   рубцовой   склерозированной
соединительной ткани.

ФИЗИЧЕСКИЕ МЕТОДЫ ЛЕЧЕНИЯ РАН

Физиотерапию   ран   применяют   лишь   в   общем   комплексе   лечебных   мероприятий   для

непосредственного воздействия на раневой процесс, а также  на больной организм в целом.
Предварительная  хирургическая  обработка  или оперативная ревизия воспалившейся раны
там,   где   они   показаны,   являются   одним   из   важнейших   условий   высокой   эффективности
физических  методов   лечения   ран.   Раннее   их   применение,   с   учетом   биологических
особенностей   раневого   процесса,   местной   реакции   тканей   и   общего   состояния   больного
животного, служит хорошим средством профилактики раневых осложнений и борьбы с ними.

Физические методы лечения ран в первой фазе заживления имеют зада чей: ограничить

развитие  инфекции  и зону  некроза  тканей,  ускорить  отторжение  мертвых тканей,  понизить
чувствительность   нервных   окончаний,   содействовать   организации   раневого   барьера   и
переходу раневого процесса  во вторую фазу. Сильно загрязненные, а также воспалившиеся
инфицированные   раны,   с   обильным   выделением   гнойного   экссудата,   и   окружающею  их
кожу   облучают   гиперэритемными   дозами   ультрафиолетовых   лучей.   При  наличии   глубоких
карманов   и   сильном   загрязнении   раны   применяют   также  ионогальванизацию   сульфидином
или   белым   стрептоцидом.   В   случаях   образования   глубоких   гнойных   инфильтратов,
некротических   очагов   в   ране,   показано   применение   электрического   поля   ультравысокой
частоты в олиготермической дозировке.

Хорошие   результаты   дает   также   рентгенотерапия.   Ее   можно   применять   при   наличии

любой   повязки,   даже   гипсовой.   При   отсутствии   рентгенотерапевтических   установок   можно
использовать   для   рентгенотерапии   ран   диагностические   трубки.   Чем   тяжелее   раневая
инфекция, тем меньше должна быть доза.

В   последние   годы   широко   практикуют   лечение   ушибленно-рваных   ран   и   гнойно-

некротических   процессов   горячим   водяным   паром   —  в а п о р и зацию.   Установлено,   что
примесь   ихтиола,   лизола,   скипидара   (в   зависимости   от   показаний)   к   водяному   пару
повышает  лечебную эффективность:  скорее  происходит  самоочищение  раны, рассасывание
воспалительных   отеков,   развитие   грануляционной   ткани   и   восстановление   нарушенных
функций.

Во второй фазе заживления раны показаны физиотерапевтические методы, ускоряющие

образование   грануляционной   ткани   и   заполнение   ею   полости   раны:   гальванизация   и
электрическое   поле   ультравысокой   частоты  в   олиготермической   дозе.   Гальванизацию
производят   ежедневно   по   10—   15   минут.   Стерильную   прокладку   отрицательного
электрода,   смоченную  изотоническим   раствором   хлорида   натрия,   кладут   на   рану,   а
положительный электрод накладывают в пределах здоровой кожи.

Хорошие   результаты   даст   также   йод-ионогальванизация   1%-ным   раствором   йодистого

калия. Ионы йода вводятся с катода. Если подвергается лечению глубокая рана, то заполняют
стерильными марлевыми компрессами,  смоченными этим раствором, всю полость раны, затем
кладут   непосредственно  на   них   простерилизованные   и   пропитанные   тем   же   раствором
гидрофильные  прокладки   площадью   в   200—300   см

2

.   Установлено,   что   под   действием  йод-

ионофореза   раны   заживают   почти   в   2   раза   быстрее,   с   образованием  мягкого   и
эластического рубца.

В   третьей   фазе   заживления   раны   применяют   физические   методы   лечения,

содействующие превращению грануляционной ткани в зрелую волокнистую соединительную

ткань,   а   затем   в   рубцовую   и   ускоряющие   эпидермизацию.   Более   быстрое   созревание
грануляций   и   усиленное   размножение   соединительно-тканных   элементов   может   быть
достигнуто местной дарсонвализацией, ультракоротковолновой терапией (электрическое поле
ультравысокой частоты) или франклинизацией.

Для   ускорения   роста   кожного   эпителия   применяют   ультрафиолетовое  облучение   или

ионофорез   с   цинком.   При   вялых   бледных   грануляциях   и   задержке   эпидермизации
рекомендуется   местная   дарсонвализация   с   последующим   ультрафиолетовым   облучением
здоровой кожи.

Для   лечения   вяло   заживающих   ран   и   атонических   язв   применяют   ультрафиолетовое

облучение   после   предварительного   смазывания   их   5%-ным   водным   раствором   ляписа,
местную   дарсонвализацию   окружности   раны   (язвы)  конденсатором   или   эфлювием
непосредственно   на   грануляции,   диатермию.  В   последнем   случае   электроды   должны
располагаться   на   расстоянии   5—  10 см выше и ниже раны. Применяют также стерильные
парафиновые марлевые аппликации, а также поперечную гальванизацию.

Чтобы   ускорить   рассасывание   воспалительных   инфильтратов,   применяют   в   ранней

стадии   лампу   Минина,   соллюкс   с   синим   фильтром   или   парафиновые   аппликации.   При
хронических воспалительных инфильтратах  показаны: диатермия с последующим массажем,
электрическое   поле   ультравысокой   частоты   (УВЧ)   или   ионофорез   с   йодистым   калием   в
сочетании с диатермией.

КОМПЛЕКСНОЕ ЛЕЧЕНИЕ

Тяжелые   раневые   осложнения   возникают   иногда   несмотря   на   правиль ное   и   научно

обоснованное   местное   лечение   травматических   повреждений,  если   лечащий   врач
сосредоточивает свое внимание на первичном раневом очаге и упускает из вида возможность
развития   морфологических   изменений  и   функциональных   расстройств   в   других   органах   и
системах больного животного. Хорошо известно, чем тяжелее повреждение, тем легче и скорее
развиваются общие расстройства.

Комплекс сложных процессов рефлекторного и морфологического порядка, возникающих

в результате раневой инфекции и интоксикации в организме в целом и на месте повреждения,
представляет   собой   уже   не   рану,   а   раневую   болезнь,   излечение   которой   невозможно   без
патогенетической   терапии  (Н.   Н.   Бурденко).   Она   обязывает   лечащего   врача   иметь   ясное
представление  об   этиологии   и   патогенезе   раневой   болезни,   функциональном   состоянии
важнейших   систем   больного   животного,   об   особенностях   клинических   проявлений   и
функциональных   расстройствах   регуляторных   приспособлений   коры  головного   мозга.   В
зависимости от данных исследования проводят то или иное комплексное лечение.

Успех   комплексного   лечения   определяется   не   количеством   применяемых  средств   и

методов,   а   правильным   пониманием   механизма   сочетанного   действия избранных средств
на   местный   процесс   и   ту   или   другую   систему   больного   животного   (сердечно-сосудистую,
нервную,   ретикулоэндотелиальную  и   т.   д.).   Рациональное   комплексное   лечение   раневой
болезни   требует   от   врача  знания   фармакодинамики   употребляемых   химических   средств,
физических методов лечения, а также постоянного контроля за изменениями первичного  очага,
пораженных органов и общего состояния больного животного в процессе лечения.

В   состав   комплексного   лечения   открытых   повреждений   входят:   все   виды  антисептики

(механическая,   физическая,   химическая   и   биологическая),  применение   средств   общего
действия,   физиотерапия,   функциональная   терапия   и   лечебное   кормление.   Чем   полнее
обследовано   животное,   тем   легче  можно   заметить   изменения   в  течение   раневой   болезни.
При   отсутствии  объективных   данных   об   общем   состоянии   больного   животного   и   местном
воспалительном   очаге   комплексное   лечение   часто   оказывается   неполноценным,   и,
следовательно, малоэффективным.

ВТОРИЧНЫЕ ШВЫ

Швы, накладываемые на гранулирующие раны, называют вторичными. Опыт показал, что

вторичные швы ограничивают развитие рубцовой ткани,  ускоряют  в 2—3 раза  заживление
ран и улучшают функциональное состояние больного органа.

А. Н. Голиков, изучавший у собак процесс заживления гранулирующей раны, закрытой

швом,   доказал   возможность   спайки   гранулирующих   раневых  поверхностей   к   4-му   дню
после   наложения   шва.   Соединительно-тканная  спайка   образуется   путем   соединения
коллагеновых   волокон   и   фибробластического   синцития,   которые   врастают   вместе   с
капиллярами в фибринозно-гнойный раневой экссудат в виде клиньев и сливаются с таковым
же противоположной стороны раны.

В   построении   соединительной   ткани   принимают   также   участие   полибласты,

достигающие,   как   известно,   максимального   развития   в   период  выполнения   раны
грануляциями.

Вполне   сформировавшееся   соединительно-тканное   сращение   краев   и  стенок   раны

происходит через 7—8 суток. За этой стадией окончательной регенерации все последующие
изменения в эпителии и рубце носят характер дальнейшей дифференцировки и превращения
молодой   соединительной  ткани   в   более   плотную   —   рубцовую.   У   лошадей   заживление
гранулирующих  ран   по   первичному   натяжению   после   наложения   вторичных   швов
наблюдается в 75% случаев.

Наиболее   благоприятным   временем   для   применения   вторичного   шва  является   вторая

фаза   заживления   раны,   когда   она   не   содержит   некротических   тканей,   покрыта   сочными
розово-красными грануляциями и выделяет мало гноя. Во избежание ошибочных заключений
о   готовности   раны   для   наложения   вторичного   шва   проводят   предварительное
бактериоскопическое  исследование   гноя.   Хотя   раневая   микрофлора   не   имеет   такого
значения,  какое   придавали   ей   раньше,   все   же   следует   иметь   в   виду,   что   находящиеся   в
раневом   экссудате   гемолитические   стрептококки   и   анаэробы   представляют  реальную
опасность   вспышки   раневой   инфекции.   Клинический   опыт   показал,   что   обычная   раневая
микрофлора   не   препятствует   образованию   спайки   гранулирующих   поверхностей   раны,
закрытой швом. Исход заживления  определяется не количеством микробов, а биологическим
состоянием   грануляционной   ткани,   т.   е.   защитной   реактивностью   организма   в   целом.   При
невозможности   бактериоскопического   анализа   гноя   можно   ограничиться   оценкой
клинического   состояния   раны.   Мы   считаем   необходимым   окрашивать   отпечатки   раневой
поверхности по Романовскому — Гимза и Грамму.

Для   устранения   большого   напряжения   тканей   и   прорезания   швов   рекомендуются

петлевидный шов с марлевыми или резиновыми валиками, ослабляющие разрезы по краям раны;
пластическое перемещение кожно-фасциального лоскута и другие отмеченные выше способы
кожной   пластики   Кроме   того,   сближение   краев   раны   значительно   облегчается   наложением
пращевидных   клеевых   повязок   —   цинк-желатиновой,   казеиновой,   а   также   корсетной   и
липкопластырной. В случаях большого напряжения тканей лучше частично закрыть рану швами,
чем оставлять ее всю открытой.

Надраневой шов.  Стежки петлевидного шва проводят вблизи края раны  через кожу с

подкожной   клетчаткой,   не   захватывая   глубжележащих   тканей   Нити   надраневого   шва
располагаются  на   поверхности   кожи.   Этот   шов   служит   для   частичного   сближения   краев
гранулирующих ран.

Черезраневой шов  применяют в ветеринарной хирургической практике наиболее часто.

Стежки шва проходят через рану, их завязывают хирургическим или морским узлом после
полного   сближения   раневых   краев.   Мертвые  пространства,   образующиеся   в   ране,   не
отражаются на благоприятном исходе  и не вызывают инфекции окружающих тканей, если
рана соответствующим образом подготовлена (Голиков)

Подраневой шов. Рану зашивают петлевидным швом так, что стежки шва проходят под

дном раны и снаружи — параллельно ее поверхности

Наложение   вторичных   швов   на   гранулирующие   раны   следует   считать

противопоказанным при наличии воспалительного отека по окружности раны и у истощенных
больных животных с пониженной реактивностью тканей.

ПРИЧИНЫ, ЗАМЕДЛЯЮЩИЕ ЗАЖИВЛЕНИЕ РАН 

Гиповитаминозы

Понижение сопротивляемости организма инфекции и нарушения регенерации тканей иногда

возникают вследствие недостатка в организме витаминов А, В

17

 С, Д, Е и PP. Изучению местных

патологических изменений у животных при гиповитаминозах не уделялось должного внимания,
поэтому распознавание гиповитаминозов встречает большие затруднения.

Этиология.  Гиповитаминозы   могут   возникать   вследствие   повышенной   потребности

больного организма в витаминах, недостаточного подвоза или  это дает возможность легко
определить   не   только   количество   микробов   в   поле  зрения,   но   и   реакцию
ретикулоэндотелиальной   системы   у   животного.  Вторичные   швы   можно   с   успехом
накладывать   на   рубцующиеся   и   вяло  гранулирующие   раны,   если   они   предварительно
обработаны.   Характер  обработки   определяется   состоянием   их   и   давностью   ранения.   В
одних случаях ограничиваются применением химической и физической антисептики,  а в
других   прибегают   к   оперативному   вмешательству:   освежению   краев  раны,   удалению
грануляций  и  рубцовой ткани,  к  полному иссечению  раны  с пластическим замещением
кожного дефекта или только к иссечению — выравниванию ее краев.

Рис. 38. Шов, ослабляющий напряжение:

А — шов с дренажными трубками  Б —  петлевидный шов с дренажными трубками,  В —

петлевидный шов завязанный

Ранним   вторичным   швом  называют   шов,   накладываемый   на   8—20-й  день   после

ранения,   в   период   заполнения   раны   грануляциями,   когда   ре  края   не   утратили
подвижности   и   можно   наложить   шов   без   натяжения   краев  раны.   Перед   наложением
вторичных   швов   необходима   подготовка   раны,   направленная   к   подавлению   активности
раневой   микрофлоры   и   улучшению  трофики   тканей,   ультрафиолетовое   облучение,
пенициллин, жидкость Оливкова, гипертонические растворы средних солей, жидкая мазь
Вишневского или сульфаниламидные препараты.

Поздний   вторичный   шов  для   соединения   гранулирующей   раны   применяют   в

отдаленные   сроки,   не   менее   20   дней   после   ранения,   когда   она   уже   заполнена
грануляциями, образовалась рубцовая ткань и края раны утратили подвижность.

Чтобы   ускорить   рассасывание   воспалительных   инфильтратов,   повы сить

регенеративные   процессы,   местные   и   общие   иммунобиологические   реакции,   применяют
предварительно   гелиотерапию,   облучение   кварцевой   лампой   или   тепловые   процедуры   —
соллюкс, парафиновые аппликации, ультракоротковолновую терапию (УВЧ). Непосредственно
перед наложением шва удаляют рубцовую, плохо васкуляризированную ткань, отслаивают
кожу  с подкожной клетчаткой по краям раны, а в случаях больших дефектов делают, кроме
того, ослабляющие  разрезы  или насечки  кожи в шахматном  порядке, чтобы сблизить края
раны.   Такая   обработка   раны   требует   соблюдения   правил   асептики,   хорошей   аналгезии   и
тщательного   гемостаза.   Кровотечение   останавливают   марлевыми   тампонами,   смоченными   в
горячем изотоническом растворе хлорида натрия, торзированием или же перевязкой тон ким
кетгутом кровоточащих сосудов.

Вторичные   швы   различают:   по   месту   наложения   —   надраневой,   через  раневой   и

подраневой;   по   характеру   соединения   тканей   —   частичное   сближение   краев   раны   и
глухой шов.

Сближение   краев   раны   при   наложении   вторичного   шва   может   быть   этапным   и

одномоментным.

Этапное сближение краев раны особенно рекомендуется при наличии гранулирующей

раны, если предварительно не было иссечения или выскабливания грануляций и освежения
краев раны и, следовательно, наложение вторичного  глухого шва связано с опасностью
обострения раневой инфекции.  При этапном сближении рану но зашивают сразу наглухо.
Свободные   концы  каждого   стежка   завязывают   петлевидным,   легко   распускающимся
узлом. Каждый стежок до полного соприкосновения краев раны стягивают через несколько
дней,   иногда   в   несколько   приемов,   при   отсутствии   признаков   обострения   раневой
инфекции.

Этот метод вторичного наложения шва заслуживает особенно широкого применения при

больших   гранулирующих   ранах,   одномоментное   сближение  которых   невозможно   без
сильного натяжения краев раны и прорезания швов в дальнейшем.

Метод   этапного   сближения   раны   расширяет   возможности   применения  отсроченных

первичных и вторичных швов в более ранние сроки.

быстрого   разрушения   их   в   больном   организме,   в   болезненном   очаге.   Поэтому  нормальное
содержание   того   или   другого   витамина   в   организме   не   исключает   возможности   развития
местного   гиповитаминоза.   При   кормлении  животных   неполноценным   кормом   может
наступить   в   результате   длительного   витаминного   голодания,   общий   авитаминоз   с
соответствующими  клиническими   явлениями,   более   или   менее   специфичными   для
недостающего витамина.

Клиническими   наблюдениями   установлено,   что   содержание   витамина   С   (аскорбиновой

кислоты) в организме падает при острых воспалительных процессах, после больших операций,
при   задержке   гноя   в   ране   и   хронических   нагноениях.   Обеднение   организма   витамином   С
может быть выражено особенно резко при тяжелых токсемиях и септических состояниях (И.
Г. Руфанов), при остром ревматизме,  хроническом  гастрите  и т. д. Заболевания   печени и
селезенки   у   крупного   рогатого   скота   и   лошади   могут   обусловливать  прекращение   синтеза
аскорбиновой   кислоты   в   кишечнике   этих   животных.   Равным   образом   при   патологических
процессах в кишечной стенке и печени  провитамин В — рибофлавин — не превращается в
витамин В

1;

 а провитамин А — каротин — не переходит в витамин А даже при достаточном

содержании   указанных   провитаминов   в   корме.   Инфицированные   ткани   всегда  содержат
витамина С меньше, чем здоровые, так как он хуже ассимилируется, доставляется в меньшом
количестве   (вследствие   нарушения  путей   кровоснабжения)   и   легче   разрушается.   Таким
образом,   наличие   витамина   С   в   крови   в   пределах   нормы   нисколько   не   исключает
возможности развития местного гиповитаминоза С.

Важно   знать,   что   при   недостатке   витамина   С   ухудшается   свертывае мость   крови,

нарушается обмен веществ и замедляется регенерация тканей.

Клинические  признаки.  Недостаток  витамина  С  при   ранениях  выражается  появлением

цианотических,   отечных   грануляций   вследствие   повышенной   хрупкости   капилляров;
грануляции   содержат   точечные   кровоизлияния,   легко   травмируются   и   кровоточат.   Ткани
теряют   эластичность   и   становятся   хрупкими,   вследствие   чего   нередко   прорезаются
наложенные   швы  и   расходятся   края   раны.   Полагают,   что   недостаток   витамина   С   влечет
нарушение   образования   клетками   мезенхимы   коллагеновых   волокон   и   параплазматических
субстанций,   так   как   клетки,   вырабатывающие   от   вещества,  обычно   подвергаются
дегенерации.   Гнойный   экссудат   становится   кровянистым,   что   зависит,   невидимому,   от
повышенной проницаемости и ломкости  капилляров. Раны медленно  заживают, переломы
плохо срастаются. Часто образуются псевдоартрозы.

Лечение. Назначают аскорбиновую кислоту в растворе глюкозы (Вр.:  Acidi  ascorbinici

1,0,  Glucosi  40,0;  Aquae  destillatae  200,0.  M.  f.  solutio.  Sterilisetur!  D.  S. Внутрр1венно для