Инфекционный контроль (сестринское дело)

ВВЕДЕНИЕ

Практическое руководство составлено в соответствии с новым содержанием предмета, предусмотренным государственным образовательным стандартом по специальности 0406 «Сестринское дело», 0407 «Лечебное дело», 0408 «Акушерское дело». Большинство рассматриваемых в учебнике технологий и процедур стандартизированы.

Авторы уделяют большое внимание актуальной проблеме отечественного здравоохранения — внутрибольничной инфекции, предлагая современный подход к ее профилактике: способы мытья рук (различные уровни), деконтаминации помещений лечебных учреждений и оборудования. На цветных вкладках представлено моечное, дезинфекционное, стерилизующее оборудование. Для осуществления инфекционного контроля показаны методы взятия биологического материала для бактериологического и паразитологического исследования.

Впервые в учебнике подробно изложены меры, способствующие безопасности сестры на рабочем месте (профилактика травмы позвоночника, уменьшение воздействия токсичных веществ, облучения, инфекции).

Освещается уход за тяжелобольными: приготовление постели, размещение пациента, профилактика пролежней, помощь в одевании, кормлении, умывании и т. д.

Раскрыты психологические проблемы, возникающие у пациента в связи с невозможностью удовлетворять физиологические потребности.

В соответствии с программой в учебнике подробно даны принципы ухода за пациентом со стомой, реабилитации, а также обучения по уходу за стомой в домашних условиях.

Все процедуры и технологии в учебнике изложены в виде алгоритмов, приближающихся к современным стандартам сестринской практики.

Авторы будут благодарны организаторам сестринских служб, сестринскому персоналу лечебных учреждений, преподавателям сестринских образовательных учебных заведений, а также студентам сестринских факультетов медицинских училищ, колледжей, вузов за отзывы и замечания по содержанию и форме учебника.

Глава 1

Инфекционный контроль (сестринское дело)

Студент должен знать:

- понятие «инфекционный контроль»;

- элементы инфекционного процесса;

- определение «внутрибольничная инфекция» (ВБИ);

- масштаб проблемы ВБИ;

- резервуары возбудителей ВБИ;

- способы передачи ВБИ; группы риска ВБИ;

- общие меры предосторожности в связи с проблемой ВБИ; уровни мытья рук;

- понятия «деконтаминация», «очистка», «дезинфекция», «стерилизация»;

- способы очистки инструментов;

- преимущества и недостатки различных групп дезинфектантов;

- о потенциальном риске для здоровья сестры при неправильном приготовлении и использовании дезинфицирующих средств;

- документы, регламентирующие режимы дезинфекции; способы и режимы дезинфекции предметов ухода за больными, белья, инструментов, средства дезинфекции;

- способы и этапы предстерилизационной очистки;

- способы контроля качества предстерилизационной очистки;

- методы и режимы стерилизации;

- методы контроля паровой и воздушной стерилизации;

- принципы работы ЦСО;

меры предосторожности при работе с острыми и режущими инструментами.

Студент должен уметь:

- мыть руки до и после любой манипуляции (на социальном и гигиеническом уровне);

- надевать и снимать нестерильный халат;

- надевать стерильные и снимать использованные перчатки, надевать и снимать маску;

- пользоваться дезинфицирующими средствами;

- проводить предстерилизационную очистку инструментария;

- проводить пробы для определения качества предстерилизационной очистки;

- брать пробы биологического материала для бактериологического и паразитологического исследования.

ГЛОССАРИЙ

Понятие	Определение
Вирулентные микроорганизмы	Микроорганизмы, вызывающие заболевание
Генерализованная форма инфекции	Инфекция, распространяющаяся по всему организму, поражая различные ткани и органы
Госпитальный штамм микроорганизмов	Микроорганизмы, изменившие свою структуру в ЛПУ и обладающие полирезистентностью
Дезинфекция	Процесс, уменьшающий количество патогенных микроорганизмов (кроме бактериальных спор) находящихся на живом организме или коже, количество которых для здоровья неопасно
Деконтаминация	Процесс удаления или уничтожения микроорганизмов с целью обезвреживания и защиты — очистка, дезинфекция, стерилизация
Детергенты	Моющие средства
Интактная кожа	Кожа, не имеющая отклонений в структуре и функции
Инвазивные процедуры	Манипуляции, при которых нарушается целостность тканей, сосудов, полости
Контаминация	Обсеменение
Очистка	Процесс удаления с поверхности объекта инородных тел (органических остатков, микроорганизмов и т. д.)
Пирогенный	Повышающий температуру тела
Постоянные микроорганизмы	Живущие и размножающиеся в поверхностных и глубоких слоях кожи
Резистентность	Устойчивость
Резидентный штамм микроорганизмов	Микроорганизмы, присутствующие в норме, обязательные, пристеночные. В обычных условиях заболеваний не вызывают
Реконтаминация	Повторное обсеменение
Стерилизация	Процесс уничтожения всех микроорганизмов, включая бактериальные споры
Транзиторные микроорганизмы	Непостоянные, необязательные, просветные микроорганизмы, появляющиеся вследствие свежего контакта и имеющие ограниченный срок жизни
Экспозиционная выдержка	Промежуток времени для наступления дезинфекции (стерилизации)

1.1. Проблема внутрибольничной инфекции

Во всем мире внутрибольничные инфекции являются актуальной проблемой. Отечественные и зарубежные исследователи свидетельствуют: внутрибольничная инфекция (ВБИ) возникает как минимум у 5-12% пациентов, поступающих в ЛПУ. Смертность от нее достигает 25%, а у новорожденных ВБИ — основная причина смертности. В стационарах различного профиля периодически возникают эпидемические вспышки.

К ВБИ относят заболевания, возникающие:

• у пациентов, инфицированных в стационаре;

• у пациентов, получающих поликлиническую помощь (скорую, неотложную);

• у медицинских работников, заразившихся при оказании помощи пациентам в стационаре, поликлинике, в условиях скорой (неотложной) помощи.

В возникновении, поддержании и распространении ВБИ важнейшую роль играет медицинский персонал ЛПУ. В данном учебнике отмечены факторы, увеличивающие рост ВБИ, которые непосредственно связаны с медицинским персоналом.

1. Искусственно сформировался мощный механизм передачи возбудителей инфекций, связанный с инвазивными вмешательствами, лечебными и диагностическими процедурами, использованием медицинской аппаратуры.

2. Активизировался естественный механизм передачи возбудителей инфекционных болезней, особенно воздушно-капельный и контактно-бытовой в условиях тесного общения пациентов и медицинского персонала ЛПУ.

3. Широкое использование для диагностики и лечения сложной техники приводит к травмированию слизистых оболочек и кожного покрова, формируя «ворота» для возбудителей инфекции, поэтому требуются особые методы стерилизации. А они часто отсутствуют.

4. Медленная психологическая перестройка части клиницистов, по-прежнему рассматривающих ВБИ (пневмония, пиелонефрит, воспалительные заболевания кожи, подкожной клетчатки, в т.ч. постинфекционные инфильтраты) как неинфекционную патологию. Это приводит к несвоевременным профилактическим и противоэпидемическим мероприятиям.

В структуре ВБИ ведущее место — 75-80%, особенно в крупных городах, занимают гнойно-септические инфекции (ГСИ). Основные пути ее передачи — контактный и воздушно-капельный (аэрозольный). Факторы риска возникновения ГСИ:

• увеличение среди сотрудников числа носителей штаммов резидентного типа;

• формирование госпитальных штаммов;

• увеличение обсемененности воздуха, окружающих предметов и рук персонала;

• диагностические и лечебные манипуляции;

• несоблюдение правил размещения пациентов;

• несоблюдение правил инфекционной безопасности при уходе за пациентами; др.

Постинфекционная гнойная патология при проведении инъекции

Место проведения инъекций	Случаи постинъекционных нагноений
	Абс.	%
Поликлиника	3306	53,3
Скорая помощь	993	16,3
Больница	1077	17,4
Родовспомогательное учреждение	84	1,4
Медсанчасть, здравпункт	314	5,0
Дом отдыха, санаторий	100	1,6
В домашних условиях (членами семьи)	332	5,3
Всего:	6206	5,3

Внутрибольничные инфекции в Российской Федерации за 1995-97 гг.*

Наименование заболеваний	Зарегистрировано заболеваний В том числе в:			родильных домах (отделениях)			хирургических стационарах(отделениях)			детских стационарах (отделениях)			прочих стационарах (отделениях)			амбулаторно- поликлинических учреждениях
	1995	1996	1997	1995	1996	1997	1995	1996	1997	1995	1996	1997	1995	1996	1997	1995	1996	1997
Гнойно-септические инфекции новорожденных	14420	12842	11257	13992	12443	11043	8	6	7	404	364	191	16	25	15	-	-	1
в том числе: бактериальный менингит, сепсис, остеомиелит	494	458	464	457	424	-	-	3	1	36	30	17	1	1	-	-	-	-
омфалит	1838	1661	1461	1774	1577	1439	1	-	-	63	81	20	-	3	2	-	-	-
пиодермия, импетиго, мастит	3153	2689	2410	3042	2622	2359	5	-	4	102	63	45	4	4	2	-	-	-
конъюнктивит	7337	6543	5643	7168	6354	5547	1	-	1	164	152	84	4	11	10	-	-	1
Гнойно-септические инфекции новорожденных	14420	12842	11257	13992	12443	11043	8	6	7	404	364	191	16	25	15	-	-	1
в том числе: бактериальный менингит, сепсис, остеомиелит	494	458	464	457	424	-	-	3	1	36	30	17	1	1	-	-	-	-
омфалит	1838	1661	1461	1774	1577	1439	1	-	-	63	81	20	-	3	2	-	-	-
пиодермия, импетиго, мастит	3153	2689	2410	3042	2622	2359	5	-	4	102	63	45	4	4	2	-	-	-
конъюнктивит	7337	6543	5643	7168	6354	5547	1	-	1	164	152	84	4	11	10	-	-	1
Гнойно-септические инфекции родильниц	5167	5180	4892	5073	5115	4830	41	17	26	3	1	-	50	45	36	-	-	-
в том числе сепсис	47	39	53	46	39	48	1	-	5	-	-	-	-	-	-	-	-	-
мастит	854	792	731	812	781	725	33	6	6	2	1	—	7	1	—	—	—	—
Послеродовые инфекции	4469	4031	3705	4417	3981	3665	10	6	13	-	-	-	42	43	27	-	1	-
Послеоперационные инфекции	7014	6850	7420	737	534	541	5599	5723	6266	46	90	113	348	282	250	284	212	250
Постинфекционные инфекции	9782	8456	7779	298	278	224	869	825	785	53	72	79	2524	2157	2053	6038	5110	4638
Инфекции мочевыводящих путей	53	42	31	12	9	13	15	6	12	10	6	5	11	20	1	5	1	-
Острые кишечные инфекции	547	4534	3858	980	1024	1015	270	171	151	1198	869	963	3094	2394	1718	5	6	11
Сальмонеллезные инфекции	1857	1999	1629	111	57	88	409	364	506	834	711	765	497	848	269	6	19	1
Вирусный гепатит В	5536	4338	3598	200	123	98	1243	1027	852	204	136	116	1399	1096	820	2490	1952	1712
Вирусный гепатит С	554	560	483	15	23	19	115	124	107	11	7	4	172	146	132	241	260	221
Грипп и острые инфекции верхних дыхательных путей множественной и неуточненной локализации	964	812	1191	307	350	517	22	19	64	352	212	284	281	218	323	2	10	3
Другие инфекционные заболевания	2284	1696	1391	604	583	494	167	52	84	934	625	523	560	410	270	19	26	20

'Основные показатели здравоохранения Российской Федерации за 1995-97 гг., МЗ РФ, Федеральный центр Госсанэпиднадзора, Москва, 1998

Среди заболеваний, относящихся к ВБИ, большинство связанно с медицинскими вмешательствами. В частности, это постинфекционные осложнения (инфильтраты, абсцессы, флегмоны). Следует отметить, что многочисленные литературные данные не позволяют получить объективное представление о частоте ВБИ, развивающихся в результате диагностических и лечебных процедур, вакцинаций и профилактических осмотров.

Итак, у 69,3% госпитализированных пациентов с постинфекционными нагноениями, инъекция производилась медицинскими работниками поликлиник и скорой помощи.

Смертность пациентов с постинфекционной патологией составляет 2%, так как у 1,7% пациентов происходит генерализация инфекции.

Передаче ВИЧ и вирусов гепатита В, С, Д также способствуют инъекции. Так, серьезный первичный очаг ВИЧ был зарегистрирован в 1988 г. в Элисте и соседних городах — 250 инфицированных. Сегодня, учитывая увеличение ВИЧ-инфицированных, в том числе среди медицинского персонала, риск передачи ВИЧ во время диагностических и лечебных процедур значительно возрастает.

Вирусные гепатиты В, С, Д составляют 6-7% в общей структуре ВБИ. При росте заболеваемости гепатитом В в Российской Федерации (рис. 1.1) можно ожидать в ЛПУ увеличения риска инфицирования вирусом гепатита В.

Рис. 1.1

7-12% - кишечные инфекции, при этом 80% случаев — сальмонеллез. 7-9% внутрибольничного сальмонеллеза выявлено у медицинского персонала ЛПУ.

Исследователи отмечают, что «медицинский персонал является основным резервуаром инфекции, за счет которого обеспечивается циркуляция и сохранение возбудителя, вызывающего формирование стойких очагов сальмонеллеза в ЛПУ.»

В таблице приводится динамика инфицирования внутрибольничными инфекциями на территории РФ.

Передача патогенных микроорганизмов от пациента к пациенту происходит также, как и от пациента к персоналу.

В частности, через руки персонала передаются: золотистый стафилококк, эпидермальный стафилококк, стрептококк А, энтерококк, эшерихии, клебсиелла, энтеробактер, протей, сальмонелла, синегнойная палочка, анаэробные бактерии, дрожжеподобный гриб рода кандида, простой герпес, вирус полиомиелита, вирус гепатита А.

Учитывая количество микроорганизмов, следует помнить, что мытье рук—серьезная мера профилактики ВБИ.

1.2. Профилактика ВБИ

При уходе за пациентами профилактика ВБИ возможна при соблюдении общих мер предосторожности:

• мыть руки сразу после контакта с инфицированным материалом и пациентами (кровью и другими биологическими жидкостями организма, инфицированным пациентом или предметами ухода за ним);

• по возможности не прикасаться к инфицированному материалу;

• надевать перчатки при контакте с кровью, инфицированным материалом и биологическими жидкостями;

• мыть руки сразу после снятия перчаток;

• немедленно убирать просыпанный или пролитый инфицированный материал;

• дезинфицировать оборудование по уходу сразу после использования;

• использованный перевязочный материал сжигать.

Мытье рук—важнейшая процедура, позволяющая предупредить ВБИ.

Выделяют три уровня деконтаминации рук: социальный, гигиенический (дезинфекция), хирургический (в данном руководстве освещаются первые два уровня).

Социальный уровень: мытье не сильно загрязненных рук мылом с водой позволяет удалить с кожи большинство транзиторных микроорганизмов.

Социальная обработка рук проводится:

• перед приемом пищи;

• после посещения туалета;

• перед и после ухода за пациентом;

• при загрязнении рук.

На рис. 1.2 показаны поверхности, которые часто пропускают во время мытья рук, поэтому они остаются, как правило, грязными.

После поверхностных контактов с пациентом (например, измерение АД) мытье рук не требуется.

Рис. 1.2 Участки, пропускаемые при мытье рук.

Рис. 1.3. Подготовка к мытью рук.

Мытье рук (социальный уровень) (рис. 1.3)

Оснащение: жидкое мыло (мыльница с решеткой и кусок мыла), салфетки, бумажное полотенце.

1. Подготовка к процедуре

1 . Снимите все кольца с рук, за исключением обручального (углубления на поверхности ювелирных изделий являются местом размножения микроорганизмов).

2. Сдвиньте часы выше запястья или снимите их, положите в карман или прикрепите булавкой к халату.

3. Откройте водопроводный кран, используя бумажную салфетку, чтобы избежать контакта с имеющимися на кране микроорганизмами, отрегулируйте температуру воды.

II. Выполнение процедуры

4. Намыльте ладони (при использовании кускового мыла ополосните его и положите в мыльницу с решеткой).

5. Вымойте руки путем энергичного механического трения намыленных ладоней между собой в течение 10 с.

6. Смойте мыло под проточной водой: держите руки так, чтобы запястья и кисти были ниже уровня локтей (в этом положении вода течет от чистой зоны к грязной).

III. Завершение процедуры

7. Откройте водопроводный кран, используя бумажную салфетку,

8. Осушите руки бумажным полотенцем (полотенце из ткани быстро становится влажным и является идеальным резервуаром для размножения микроорганизмов).

Примечание. При отсутствии проточной воды может быть использован таз с чистой водой.

Мытье рук (гигиенический уровень)

Оснащение/жидкое мыло (мыльница с решеткой и кусок мыла), кожный антисептик, салфетки, бумажное полотенце.

Гигиенический уровень обработки рук — мытье с использованием антисептических средств. Это более эффективный метод удаления и уничтожения микроорганизмов.

Гигиеническая обработка рук проводится:

• перед выполнением инвазивных процедур;

• перед уходом за пациентами с ослабленным иммунитетом;

• перед и после ухода за раной и мочевым катетером;

• перед одеванием и после снятия перчаток;

• после контакта с биологическими жидкостями организма или после возможного микробного загрязнения.

I. Подготовка к процедуре

См. «Социальный уровень» — п.п. 1-3.

II. Выполнение процедуры

4. Намочите руки под струей проточной воды или в тазу с водой.

5. Нанесите на руки 3-5 мл антисептика или тщательно намыльте руки мылом.

6. Вымойте руки, используя технику, показанную на рис. 1.4:

а) энергичное механическое трение ладоней — 10 с, повторить 5 раз;

б) правая ладонь растирающими движениями моет (дезинфицирует) тыльную сторону левой кисти, затем левая ладонь также моет правую, повторить 5 раз;

в) левая ладонь находится на правой кисти; пальцы рук переплетены, повторить 5 раз;

г) пальцы одной руки согнуты и находятся на другой ладони (пальцы переплетены), повторить 5 раз;

д) чередующее трение больших пальцев одной руки ладонями другой; ладони сжаты, повторить 5 раз;

е) переменное трение ладони одной руки сомкнутыми пальцами другой руки, повторить 5 раз.

7. Промойте руки под проточной водой, держите их так, чтобы запястья и кисти были ниже уровня локтей.

III. Завершение процедуры

8. Закройте кран, используя бумажную салфетку.

9. Осушите руки бумажным полотенцем.

Примечание. Если невозможно гигиеническое мытье рук водой, можно обрабатывать их с помощью 3-5 мл антисептика (на основе 70-градусного спирта) в течение 2 мин.

Рис. 1.4 Мытье рук

Использование защитной одежды

При правильном использовании защитная одежда (халат, маска, фартук, очки) становится барьером на пути передачи инфекции от сестры к пациенту и наоборот. В некоторых же случаях она может создать ложное чувство безопасности и даже увеличить риск передачи внутрибольничной инфекции.

Халаты обеспечивают более полную защиту, чем полиэтиленовые или клеенчатые фартуки, но они быстрее промокают и инфицируются. Применяя фартуки и халаты для ухода, предупреждающего передачу инфекции, необходимо ограничить их использование одной процедурой, после которой их следует сменить (например, после смены загрязненного постельного или нательного белья пациента).

Перчатки (чистые или стерильные) — тоже часть защитной одежды. Их надевают при:

· контакте с кровью;

· контакте с семенной жидкостью или влагалищным секретом;

· контакте со слизистой оболочкой носа, рта;

· контакте с любой биологической жидкостью, независимо от присутствия в ней крови;

· нарушении целостности кожи на руках сестринского персонала и/или у пациента;

· необходимости работать с материалами или предметами (катетерами, эндотрахеальными трубками и т. п.), загрязненными кровью или другими биологическими жидкостями (мочой, фекалиями).

Стерильные перчатки можно надевать без посторонней помощи.

Запомните! Правша надевает сначала правую перчатку, а снимает — левую.

Рис. 1.5. Надевание стерильных перчаток.

Последовательность действий при надевании стерильных перчаток (рис. 1.5):

I. Подготовка к процедуре

1. Разверните упаковку с перчатками (можно положить упаковку на стол).

II. Выполнение процедуры

2. Возьмите перчатку за отворот левой рукой так, чтобы ваши пальцы не касались внутренней поверхности перчатки.

3. Сомкните пальцы правой руки и введите их в перчатку.

4. Разомкните пальцы правой руки и натяните перчатку на пальцы, не нарушая ее отворота.

5. Заведите под отворот левой перчатки 2, 3 и 4-й пальцы правой руки, уже одетой в перчатку так, чтобы 1-й палец правой руки был направлен в сторону 1-ого пальца на левой перчатке.

6. Держите левую перчатку 2, 3 и 4-м пальцами правой руки вертикально.

7. Сомкните пальцы левой руки и введите ее в перчатку.

III. Завершение процедуры

8. Расправьте отворот вначале на левой перчатке, натянув ее на рукав, затем на правой с помощью 2 и 3-его пальцев, подводя их под подвернутый край перчатки.

В зависимости от ситуации, перчатки лучше надеть на рукава халата. В тех случаях, когда не требуется халат с длинными рукавами, перчатки закрывают запястье и часть предплечья.

Маски даже закрытого хирургического типа также обеспечивают минимальную защиту от микроорганизмов, передающихся воздушно-капельным путем. Если материал, из которого сделана маска, и обеспечивает хорошую фильтрацию микроорганизмов, то ее защитные свойства теряются при неплотном прилегании к лицу. Маску все равно следует надевать, но носить ее непрерывно можно не более 2 ч. При увлажнении от выдыхаемого воздуха ее следует сменить раньше, поскольку влажная теплая ткань— прекрасная питательная среда для размножения микроорганизмов.

Обувь и медицинские шапочки не защищают от инфекции.

Защитные очки и щитки могут защитить глаза, нос, рот от попадания в них крови и другой биологической жидкости.

Пользуясь защитной одеждой, важно правильно снять ее, чтобы не загрязнить свои руки, одежду и окружающие предметы.

Использованные перчатки снимайте так, как показано на рис. 1.6:

Рис. 1.6. Снятие перчаток.

1. Пальцами правой руки в перчатке сделайте отворот на левой перчатке, касаясь ее только с наружной стороны (а);

2. Пальцами левой руки сделайте отворот на правой перчатке также касаясь ее только с наружной стороны (б);

3. Снимите перчатку с левой руки, выворачивая ее наизнанку и держа за отворот (в, г);

4. Держите снятую с левой руки перчатку в правой руке (д);

5. Левой рукой возьмите перчатку на правой руке за отворот с внутренней стороны (е) и снимите перчатку с правой руки, выворачивая ее наизнанку (ж);

6. Обе перчатки (левая оказалась внутри правой) поместите в емкость с дезинфицирующим средством (если они многоразового использования) или выбросьте в непромокаемый мешок (з).

Снимая халат, поступайте, как показано на рис. 1.7:

Рис. 1.7. Снятие халата.

• касайтесь руками только нижней части рукавов, поскольку они были защищены перчатками и остались чистыми;

• снимая халат со второй руки, выверните его наизнанку.

Снимая маску, держите ее за завязки (рис. 1.8).

Рис. 1.8. Снятие маски.

Обращение с постельным бельем

Постельное и нательное белье в соматических отделениях ЛПУ меняют пациентам не реже 1 раза через 7 дней. Загрязненное же выделениями должно меняться незамедлительно.

Техника смены белья подробно изложена в главе 4. При этой процедуре необходимо соблюдение общих мер предосторожности:

• надевать перчатки при контакте с бельем, испачканным биологическими жидкостями человека;

• не трясти постельные принадлежности, чтобы предупредить загрязнение окружающей среды;

• укладывать грязное белье сразу в мешки (клеенчатые или полиэтиленовые), не выносить его без мешка из помещения, в котором было снято, не сортировать и не встряхивать в помещении, где находится пациент;

• запрещается разборка грязного белья в отделении;

• мокрое постельное и нательное белье складывать в непромокаемый мешок и в нем переносить в другое помещение;

• никогда не бросать грязное белье на пол и не складывать на другие поверхности (стул, стол и т. п.).

Временное хранение (не более 12 ч) грязного белья в отделениях допускается только в санитарных комнатах или других специально отведенных помещениях в закрытой таре (металлических, пластмассовых бочках, плотных ящиках, других емкостях, подвергающихся дезинфекции).

Персонал, работающий с грязным бельем, должен быть обеспечен санитарной одеждой.

Чистое белье хранится в специально выделенных помещениях и шкафах.

Доставка чистого и загрязненного белья в прачечную осуществляется специально выделенными транспортными средствами (маркированными тележками) в упакованном виде и в закрытых контейнерах. Перевозка чистого и загрязненного белья в отделениях допускается.

Режим мытья посуды в лечебном отделении

В буфетной лечебного отделения должно быть помещение (не менее 6 кв.м. в котором устанавливают 5-гнездную ванну для мытья посуды.

Мытье столовой посуды:

• механическое удаление остатков пищи щеткой или деревянной лопаткой;

• мытье посуды щеткой в первом гнезде ванны при температуре воды 50°Сс добавлением разрешенного моющего средства;

• погружение посуды во второе гнездо ванны с дезинфицирующим средством (экспозиционная выдержка зависит от используемого дезинфицирующего средства);

• ополаскивание в третьем гнезде ванны посуды под горячей проточной водой при температуре не ниже 65°С;

• просушивание посуды на специальных полках или решетках.

Мытье стеклянной посуды и столовых приборов:

• механическая очистка;

• мытье и обеззараживание в первом гнезде ванны с добавлением разрешенных моющих и дезинфицирующих средств (экспозиционная выдержка зависит от конкретного моющего средства;

• ополаскивание посуды во втором гнезде ванны под горячей проточной водой при температуре не ниже 65°С;

• просушивание посуды на специальных полках или решетках.

Мытье кухонной посуды.

Кастрюли, ведра, термосы очищают от остатков пищи и моют горячей водой (50°С) с добавлением разрешенных моющих средств. Ополаскивание посуды осуществляют горячей водой при температуре не ниже 65°С.

Мочалки для мытья посуды и ветошь для протирки столов по окончании уборки кипятят в течение 15 минут или дезинфицируют с помощью разрешенных дезинфицирующих средств, затем сушат и хранят в специально отведенном месте.

Ткань, использованная для мытья полов, после уборки подлежит дезинфекции, ополаскиванию и сушке.

Деконтаминация помещений и оборудования

Важным направлением профилактики внутрибольничной инфекции является деконтаминация — процесс удаления или уничтожения микроорганизмов с целью обезвреживания и защиты. Он включает в себя очистку, дезинфекцию и стерилизацию.

В зависимости от степени риска инфицирования от оборудования и окружающей среды применяется различный уровень деконтаминации.

Низкую степень риска представляют предметы, находящиеся в контакте с нормальной или интактной кожей, или обсемененные поверхности, непосредственно не контактирующие с пациентом (стены, потолки, полы, раковины, мебель). Для деконтаминации достаточно очистки.

Средняя степень риска — оборудование, которое не применяется для инвазивных процедур на коже и других стерильных частях организма, но контактирующее со слизистыми оболочками, неинтактной кожей или другими частями организма, обсемененными вирулентными микроорганизмами, или другими микроорганизмами, передающимися контактным путем (гастроэнтерологическое, гинекологическое оборудование, термометры и др.) Для деконтаминации необходима очистка с последующей дезинфекцией.

Высокая степень риска — инструменты, применяющиеся для инвазивных процедур (проникающих в ткани, сосуды, полости). Для деконтаминации необходима очистка с последующей дезинфекцией и стерилизацией.

Методы очистки

Тщательная очистка и мытье могут удалить с поверхности большинство микроорганизмов. Очистка должна предшествовать дезинфекции и стерилизации. Она выполняется с помощью воды, механических приспособлений и детергентов. Возможна как ручная, так и аппаратная очистка, использование ультразвука, специальных детергентов и порошков. Ручная более трудоемка и не всегда возможна при деконтаминации некоторого оборудования или отдельных его частей (например, анестезиологического оборудования).

Уборка различных помещений ЛПУ предусматривает очистку как метод деконтаминации.

Все помещения должны содержаться в чистоте. Необходимо помнить, что несоответствующая требованиям или неправильная уборка помещений может увеличить риск распространения инфекции. Уборочный инвентарь (швабры, тряпки, щетки, ведра) выделяют отдельно для различных помещений отделения и соответственно маркируют. После уборки весь уборочный инвентарь промывают в горячей (65°С) воде с моющими средствами и хранят в сухом виде.

Установлено, что количество бактерий в воздухе удваивается после подметания пола веником. Более безопасными и эффективными средствами уборки являются пылесосы со специально встроенными воздушными фильтрами (пылесос удаляет до 98% микроорганизмов вместе с пылью), хлопчатобумажные или нейлоновые щетки. Пол следует мыть с моющим средством 2 раза в день (а при необходимости и чаще).

Поверхности выше уровня пола нужно ежедневно чистить пылесосом или подвергать влажной уборке с моющим средством. Использование дезинфицирующих средств для уборки палат, холлов не рекомендуется, поскольку дезинфицирующие средства активны только в растворенном виде, а при быстром высыхании поверхностей действие дезинфицирующих средств прекращается и не обеспечивается необходимая для дезинфекции экспозиционная выдержка. Рассыпанные или пролитые материалы, загрязненные и содержащие биологические жидкости убирают немедленно с помощью соответствующего дезинфицирующего средства.

Ручная очистка оборудования. Все оборудование, подвергающееся в последующем дезинфекции и стерилизации, перед очисткой должно быть разобрано. Для мытья и удаления с поверхности оборудования жидкостей, содержащих белок (кровь, мокроту и т. п.), нужно предварительно использовать холодную воду, так как горячая вода и некоторые дезинфицирующие средства фиксируют (коагулируют белок), который будет трудно удалить при последующих этапах деконтаминации.

Для очистки поверхностей оборудования можно использовать 0,5-1% раствор натрия гидрохлорида или другие имеющиеся средства.

При использовании аппаратов очистка изделий проводится более качественно и безопасно для персонала и пациента путем промывки сначала холодной, а затем теплой водой с детергентом.

Многие современные аппараты являются одновременно моющими и дезинфицирующими.

Дезинфекция направлена на разрыв цепочки инфекционного (эпидемического) процесса, ограничивая функционирование одного из его основных звеньев — возбудителя заболевания. Она производится с помощью физических и химических методов. Когда возможно, нужно использовать физические методы дезинфекции, поскольку они более надежны, легче контролируются, нетоксичны.

Цель дезинфекции — уничтожение патогенных и условно-патогенных микроорганизмов на объектах внешней среды палат и функциональных помещений отделений ЛПУ, на медицинском оборудовании и инструментарии.

При некоторых ВБИ (ГСИ, кишечные инфекции) дезинфекция является практически единственным способом снижения заболеваемости в ЛПУ.

Запомните! Все госпитальные штаммы возбудителей ВБИ обладают значительной устойчивостью к воздействию обычных рабочих растворов дезинфицирующих средств.

Использование для очаговой дезинфекции растворов более низкой концентрации, чем указано в методических указаниях, ведет к появлению в стационарах еще более устойчивых к внешним воздействиям госпитальных штаммов.

Виды дезинфекции представлены на рис. 1.9.

Тактика и способы профилактической и очаговой дезинфекции существенно отличаются. «Следует помнить, что дезинфекция проводится с учетом эпидемической опасности и значимости ряда предметов и оборудования как предполагаемых факторов риска в реализации того или иного механизма передачи ВБИ».

Чтобы дезинфекция была эффективной, нужно знать назначение средств и методов дезинфекции, способы и режимы их применения для обеззараживания объектов, рекомендуемую для этих целей аппаратуру и приборы, особенности обеззараживаемых объектов, способы защиты персонала, проводящего дезинфекцию, и находящихся в помещении пациентов.

Физические средства дезинфекции: высушивание, воздействие высокой температурой (сжигание, прокаливание, кипячение), пар, горячий воздух, ультрафиолетовое облучение и др.

При ультрафиолетовом облучении антимикробное действие обеспечивается УФ-лучами, исходящими от специальных настенных, потолочных, переносных и передвижных бактерицидных ультрафиолетовых установок. Их используют с целью снижения микробной обсемененности воздуха и поверхностей различных объектов ЛПУ.

Сухой горячий воздух при температуре более 100 °С изменяет органические вещества, растительные и животные волокна, а свыше 170 °С — обугливает их. Он оказывает бактерицидное, вирулицидное, фунгицидное, спороцидное и инсектицидное действие. Сухой горячий воздух (160°-180 °С) применяют в воздушных стерилизаторах, камерах и аппаратах для дезинфекции посуды, инструментов, изделий медицинского назначения из металла, стекла, силиконовой резины, а в камерах при температуре 80-100 °С — для дезинсекции одежды, постельных принадлежностей и других вещей.

Водяной пар проникает вглубь обрабатываемых объектов, оказывает сильное антимикробное действие: вегетативные формы патогенных и условно-патогенных микроорганизмов погибают от воздействия пара при температуре 80°С, а споровые формы при температуре 120°С в течение 10 мин. Водяной насыщенный пар под давлением используют в дезинфекционных камерах для обеззараживания одежды, постельных принадлежностей, а в паровых стерилизаторах для дезинфекции аптечной и лабораторной посуды, изделий медицинского назначения и предметов ухода из стекла, коррозионностойкого металла, изделий из текстильных материалов, резины, латекса и отдельных полимерных материалов.

Горячая вода (60-100°С) оказывает антимикробное действие в отношении многих микроорганизмов, вегетативные формы которых погибают в течение 30 мин. Горячую воду с добавлением моющих средств используют для механического удаления загрязнений и микроорганизмов при стирке белья, мытье посуды, уборке. Кипячение в воде при температуре 80°С в течение 15-45 мин применяют для обеззараживания белья, посуды, инструментов, изделий медицинского назначения, предметов ухода за больными, игрушек и других объектов. При добавлении в воду 2-процентного раствора натрия гидрокарбоната антимикробное действие кипячения усиливается.

При соблюдении всех условий данный метод обеспечивает дезинфекцию высокого уровня.

Оборудованием инструментарий должны быть тщательно очищены, положены в контейнер и запиты водой. Вода нагревается до кипения. Дезинфекция начинается с момента закипания и продолжается 5 мин. Для предупреждения коррозии в воду добавляется 2-процентный раствор натрия бикарбоната. Использованные инструменты необходимо прокипятить или обработать в паровом стерилизаторе и высушить в течение дня. После кипячения воду из кипятильника слить и вытереть его насухо.

Оборудование, которое разрушается в результате кипячения, дезинфицируют в течение 5 мин при температуре 80°С. При этом должна быть обеспечена возможность точной регулировки температуры воды в кипятильнике.

Дезинфекция кипящей водой белья, постельных принадлежностей, столовых приборов, лабораторной стеклянной посуды и инструментов перед стерилизацией в паровом стерилизаторе возможна в некоторых типах моечных машин.

Максимальная эффективность достигается при использовании машин, в которых процессы очистки, кипячения и сушки совмещены и происходят последовательно. В этих машинах для обработки инструментов технологический цикл начинается с ополаскивания и мытья инструментов. На этом этапе удаляется большинство микроорганизмов, что позволяет сократить время дезинфекции (1 мин — 80-85°С, 3 мин — 70°С, 10 мин — 93°С).

Уровень достигаемой дезинфекции (высокий или низкий) зависит от типа машины и комплекса условий.

Химические средства дезинфекции составляют 7 групп, представленных в таблице. Химические средства применяются в основном для дезинфекции термолабильного оборудования многократного применения. Например, эндоскопические приборы требуют химической дезинфекции высокого уровня.

После химической дезинфекции оборудование необходимо промыть стерильной водой. При ее отсутствии используют свежекипяченую воду. После ополаскивания оборудование хранят в сухом виде и предохраняют от инфицирования.

Дезинфекцию громоздкого оборудования проводят методом протирания поверхности ветошью, смоченной дезинфицирующим средством, и последующим просушиванием. На чистых поверхностях можно применять 70-процентный этиловый спирт, в этом случае сушить поверхность необязательно.

Средства дезинфекции

Группа, название, общая характеристика	Назначение, АМД — (антимикробное действие)	Применение, форма выпуска		Отрицательные свойства и средства защиты
Галоидо- содержащие		Необходимо строго соблюдать концентрации рабочих растворов, экспозицию дезинфекции и другие особенности, изложенные в методических рекомендациях для каждого препарата		При приготовлении рабочих растворов пользоваться средствами индивидуальной защиты (перчатки, респираторы). Готовые растворы хранить только с закрытой крышкой. Вызывают коррозию металлов. Инактивируются органическими материалами. Отсутствует спорацидная активность (кроме нейтрального аналита). Потенциальная канцерогенность при контакте с формальдегидом.
А. Хлорсодержащие
Гипохлориты кальция • хлорная известь Содержит 28-35% активного хлора.	АМД: бактерии, вирусы, грибы. Для дезинфекции поверхностей, сан-тех. оборудования, уборочного инвентаря, выделений	Порошок, плохо растворимый в воде. Нестойкое соединение. Применяется в сухом виде и в виде растворов. При растворении образует взвесь. Срок хранения основного раствора — 10 дней.	3 класс токсичности Обесцвечивание тканей, коррозия металлов, раздражение слизистых дыхательных путей, кожных покровов. Средства защиты: перчатки, ПХВ, респиратор РУ-60 МЗ или РПГ-67 с патроном марки Б
• гипохлорит кальция — нейтральный содержит до 70% активного хлора; технический содержит 35-40% активного хлора	АМД: бактерии, вирусы, грибы Дезинфекция помещений, предметов обстановки, посуды	Белый порошок	4 класс токсичности Ткани и изделия из металла обеззараживанию не подлежат. Средства защиты: перчатки, респиратор (см. выше).
Гипохлориты лития • Лидос 20 активный хлор 15-20% • Лидос 25 активный хлор 20-25%	АМД: бактерии, (ТБ+), вирусы. Грибы Дезинфекция белья, поверхностей, сан- тех. оборудования	Гранулы, хорошо растворимые в воде	3 класс токсичности. Средства защиты: перчатки, ПХВ, респиратор (см. выше) коррозия металла, обесцвечивание тканей, раздражение дыхательных путей, кожи, слизистых
Гипохлориты натрия • Жавель Активный хлор 3,3-4,5%	АМД: бактерии, (ТБ+), вирусы, грибки. Дезинфекция поверхностей, сан.-тех. оборудования, белья	Концентрат 3,3-4,5% активный хлор. Таблетки — 58-60% активный хлор	3 класс токсичности Имеют резкий запах, раздражают дыхательные пути, слизистые, кожу
• Маранон X Активный хлор 4,5- 5,1% • Аналит • Каталит (электрохимические активированные растворы натрия хлорида)	АМД: бактерии, (ТБ+), вирусы, грибки Для дезинфекции систем диализных аппаратов. Для профилактической, текущей и заключительной дезинфекции. АМД: бактерии, (ТБ+), вирусы, дерматомикозы Дезинфекция изделий медицинского назначения. для текущей и заключительной дезинфекции.	Жидкий концентрат Раствор, получаемый на электрохимических установках разного класса. В зависимости от модификации имеют разные рН. Применение раствора согласно методическим рекомендациям.	Обладает коррозирующими свойствами. Средства защиты: перчатки ПХВ
• Нейтральный аналит (электрохимически активированный раствор натрия хлорида)	АМД; бактерии (ТБ+), вирусы, грибы, споры Для профилактической, текущей и заключительной дезинфекции, предстерилизационная очистка инструментов, стерилизация изделий медицинского назначения.	Раствор, получаемый на разных электрохимических установках. Применение раствора согласно методическим рекомендациям.	При работе с растворами сильной концентрации — перчатки ПХВ Нельзя обрабатывать изделия из металла

Б. Органические хлорсодержащие соединения
• хлорамин Б, ХБ, Д активный хлор 26-29%, 21-24%, 44-53%	АМД: бактерии, (ТБ+), вирусы, грибы Для текущей и заключительной дезинфекции поверхностей, помещений, уборочного инвентаря, сан.-тех. оборудования, предметов ухода, посуды, изделий медицинского назначения	Порошок, легко растворимый в воде	Изделия из металла коррозируют Б, ХБ — 4 класс токсичности Д—3 класс токсичности
•Трихлороль • Хлорина Активный хлор 20,8%	АМД: бактерии (кроме туберкулеза), вирусы, грибы Для дезинфекции поверхностей, помещений, мебели, оборудования, инвентаря.	Порошок белого цвета Срок хранения готового раствора — 4 недели	3 класс токсичности
В. Органические соединения на основе изоциануратов
•ДП-2 Активный хлор 35-40%	АМД: бактерии, (ТБ+), вирусы, грибы Для дезинфекции поверхностей, белья, сан.-тех. оборудования	Порошок	Обладает сильным резким запахом. 3 класс токсичности
• Клорсепт Активный хлор 60 %	АМД: бактерии, (ТБ+), вирусы, грибы Для дезинфекции сан.-тех. оборудования, инструментов медицинского назначения, белья, посуды, биологических жидкостей	Гранулы, таблетки Рабочие растворы хранятся 24 часа	3 класс токсичности.
• Пресепт (дихлоризоцианурат 50%)	АМД: бактерии, (ТБ+), вирусы Дезинфекция текущая, заключительная (поверхности, уборочный инвентарь)	Таблетки, хорошо растворимые в воде	Применяются в отсутствии людей. После дезинфекции — влажная уборка, проветривание. 3 класс токсичности. Работать с применением средств защиты: перчатки, ПВХ, очки, респираторы РУ-60М или РПГ67 с патроном марки Б. Лицо и руки после работы вымыть водой.
• Деохлор Активный хлор 44,1%	АМД: бактерии, вирусы, инфекции, грибы. Текущая и заключительная дезинфекция посуды, белья, изделий мед. назначения, инвентаря, предметов ухода из пластмасс	Таблетки	Коррозируют металлы 3 класс токсичности
Г. Галоидосодержащие на основе брома
•Аквабора	АМД: бактерии, (ТБ-); грибы. Дезинфекция помещений с плесенью, поверхностей, белья	Жидкий концентрат	3 класс токсичности
Д. Галоидосодержащие на основе йода
• Йодонат	Обеззараживание кожи операционного поля	Жидкость	Слаботоксичны
II. Кислородосодержащие
А. Перекисные соединения
• Перекись водорода 30% - 3%	АМД: бактерии, (ТБ-)_;вирусы, грибы и бактериальные споры. Для дезинфекции поверхностей, посуды, белья, предметов ухода, изделий медицинского назначения. Дезинфекция мягких контактных линз. 6% перекись водорода — стерилизация изделий медицинского назначения; для предстерилизационной обработки: при сочетании с моющим средством	30% концентрат	3 класс токсичности Ожоги кожи, слизистых оболочек. Работать с применением средств индивидуальной защиты: перчатки, респираторы, очки. 3-процентный раствор—для перчаток. При стерилизации эндоскопов, возможно ухудшение их качества
• Перамин -31,5 ±2,5%	АМД: бактерии (ТБ+), вирусы, грибы. Дезинфекция поверхностей, посуды, белья, предметов ухода, сан.-тех. оборудования, изделий медицинского назначения	Порошок	3 класс токсичности
• Перформ	АМД: бактерии, вирусы, грибы, споры. Для текущей, профилактической, заключительной дезинфекции поверхностей, помещения, инвентаря, оборудования, сан-тех. оборудования Преимущества: • экономичен —дезинфекция и очистка в одном этапе; • не содержит альдегидов; • высокая моющая способность; • используется в присутствии людей; • малотоксичен.	Белый порошок, хорошо растворимый в воде, обладает моющими свойствами. Рабочие растворы хранят 24 ч.	4 класс токсичности. Средства защиты: перчатки. Можно работать в присутствии людей
• ПВК— перекись водорода 38%	АМД: бактерии, (ТБ+), сибирская язва, вирусы и грибы Дезинфекция текущая, профилактическая, заключительная	Жидкость Рабочие растворы, хранятся 5 дней	3 класс токсичности
• ПВК-1 —перекись водорода 40%	АМД: бактерии, вирусы, грибы, споры Дезинфекция поверхностей, посуды, белья, оборудования, изделий медицинского назначения	Порошок, таблетки	3 класс токсичности
Б. Надкислоты
• Первомур (перекись водорода 38% + муравьиная кислота)	АМД: весь спектр от бактерий до спор Дезинфекция и стерилизация инструментов медицинского назначения	Жидкость. Полученный раствор хранят не более 1 суток в герметично закрытой таре.
• Дезоксон 1 • Дезоксон 4	АМД: весь спектр Стерилизация изделий медицинского назначения. Дезинфекция поверхностей, мед. назначения, оборудования из полимеров, материалов, резин, стекла, коррозионностойких металлов	Жидкость с запахом уксусной кислоты	3 класс токсичности Нестабильность (особенно в разведенном виде) Сильно коррозирует металлы
• Виркон	АМД: бактерии (ТБ-), вирусы, Дезинфекция и предсте-рилизационная очистка изделий медицинского назначения, в т.ч. эндоскопов	Концентрат	По наблюдениям оказывает аллергическое воздействие и ухудшает качество эндоскопов и инструментов к ним. Вызывает коррозию.
III. ПАВ (поверхностно-активные вещества)
• Амфолан Д	АМД: (ТБ-) бактерии, в т.ч. при ООИ — особо опасных инфекциях Обладает моющими свойствами. Дезинфекция посуды, белья, поверхностей, сан.-тех. оборудования	Жидкость		4 класс токсичности
•Аламинол	АМД: бактерии, (ТБ+), грибы, вирусы. Обладает моющими свойствами. Для дезинфекции поверхностей, приборов, сан.-тех. оборудования, белья, изделий медицинского назначения, посуды.	Концентрат. Срок хранения рабочего раствора до использования 10 суток.		Слаботоксичен. Слабая сенсибилизация, оказывает выраженное местное раздражающее действие на слизистые и кожу. Работать в перчатках. При нарушении режимов и концентрации сильно коррозирует металлические инструменты
• Деконекс-денталь ББ	АМД: бактерии, вирусы, грибы. Дезинфекция и предстерилизационная очистка изделий медицинского назначения (стоматологических инструментов)	Концентрат
• Деорол	АМД: бактерии, (ТБ-). Для дезинфекции поверхностей и сан.-тех. оборудования	Концентрат. Рабочие растворы до использования хранятся 1 день		3 класс токсичности
• Дюльбак ДТБ/п	АМД: бактерии, (ТБ-), вирусы. Дезинфекция предметов ухода, предстерилизационная очистка изделий медицинского назначения	Концентрат		3 класс токсичности
• Катамин АБ	АМД: бактерии, (ТБ-). Дезинфекция поверхностей, сан-тех. оборудования, посуды, цистерны	Концентрат		3 класс токсичности
• Санифект - 128	АМД: бактерии, (ТБ-). Дезинфекция поверхностей, инвентаря, оборудования	Концентрат		3 класс токсичности
• Септодор	АМД: широкий спектр: бактерии (грамм + и -). (ТБ-), грибы, вирусы. Дезинфекция в банях, парикмахерских, бассейнах, сан.-тех. оборудования, предметов ухода, белья. Не оказывает раздражающего воздействия на кожу, малотоксичен (рабочий раствор), не вызывает коррозию металла.	Концентрат		Средства защиты: перчатки ПХВ.
IV. Гуанидины	АМД: бактерии, (ТБ+), грибы
•Демос • Катамин АБ	Дезинфекция, а при сочетании с ПАВ - спектр шире. Дезинфекция и предстерилизационная очистка в один этап (некоторые препараты), поверхности, белье, посуда, изделия медицинского назначения.	Жидкость			3 класс токсичности
• Полисепт • Фугоцид	АМД: бактерии (ТБ-). Дезинфекция белья и поверхностей: бактерицидная пленка сохраняется 7-10 дней.	Порошок, концентрат			3 класс токсичности. Из-за образующейся пленки не применяется для дезинфекции рук и инструментов.
• Гибитан • (хлоргексидина биглюконат)	АМД: бактерии. Дезинфекция поверхностей, белья, посуды, промывание полостей водным раствором, обработка рук персонала. Дезинфекция инструментов — спиртовым раствором	Жидкость			4 класс токсичности. Поверхности, руки становятся липкими
• Лизетол АФ	АМД: бактерии (все), грибы, вирусы Дезинфекция и предстерилизационная обработка. Дезинфекция инструментов спиртовым раствором • не содержит альдегидов • используется многократно — не менее 7 дней • не портит изделия из термолабильных материалов • не коррозирует металлы • высокая очищающая способность • не обладает фиксирующими свойствами	Жидкость			Умеренно токсичен. Работа — в перчатках ПХВ. Избегать попадания в глаза и на кожу.
V. Альдегидсодержащие
• Формальдегид	АМД: бактерии, вирусы, грибы Дезинфекция верхней одежды (при необходимости использования низких температур). Стерилизация (газовая) изделий медицинского назначения (термолабильных).	Жидкость			2 класс токсичности. Большой токсический эффект. Сильный запах. Все средства защиты.
• ГигасептФФ	АМД: бактерии (все), грибы, вирусы, споры Дезинфекция, стерилизация изделий медицинского назначения, в т. ч. эндоскопов. • не оказывает коррозионного действия • не портит изделий из термолабильных материалов • используется для эндоскопов, принадлежностей для анестезиологии и реанимации.	Концентрат Экономичен (рабочий раствор используется многократно — не менее 16 дней)			Умеренно токсичен. Приготовление и работа с защитой органов дыхания, кожи, рук, глаз. Избегать попадания в желудок. Хранится только в закрытой таре.
• Сайдекс • Глутарал • Дюльбак • Лизоформин-3000	Дезинфекция и стерилизация термолабильных инструментов (изделий медицинского назначения). Обладает фиксирующим эффектом, в связи с чем инструмент, загрязненный биологической жидкостью, должен быть вначале промыт водой (вода затем подлежит дезинфекции) Дезинфекция и стерилизация изделий медицинского назначения	Готовые растворы изготовление и работа со специальным порошком Концентрат, из которого готовят рабочие растворы			Обладает резким специфическим запахом. Нельзя применять в присутствии людей. Раздражающее действие на органы дыхания и слизистые оболочки. Сильная коррозия металла. Все средства защиты.

• Дезоформ	АМД: бактерии (ТБ+), вирусы, грибы. Дезинфекция инструментов, в т. ч. эндоскопов.	Концентрат, из которого готовят рабочие растворы	Слабое раздражающее действие на слизистые оболочки и кожу. Обладает сенсибилизирующим эффектом. Работать со средствами защиты кожи. После использования проветривать помещения.
• Деконекс	АМД— широкий спектр. Дезинфекция и стерилизация изделий медицинского назначения.	Концентрат, из которого готовят рабочие растворы	Слабое раздражающее действие на слизистые, кожу. Обладает сенсибилизирующими свойствами. Средства защиты — перчатки. После дезинфекции - проветривание
• Бионол	АМД: бактерии, (ТБ+), вирусы, грибы. Дезинфекция поверхностей	Жидкость	Раздражает глаза и кожу
• ТРН 5225 (терралин) 1: 400	АМД: бактерии (кроме ТБ), грибы, вирусы. Дезинфекция и предстери-лизационная обработка одновременно влажная уборка, дезинфекция поверхностей и инвентаря в ЛПУ. Обладает высокими моющими свойствами. Совместим с обрабатываемыми материалами (кроме поверхностей из акрилового стекла и дерева).	Жидкость	Умеренно токсичен. Работать в резиновых перчатках. Избегать попадания в глаза, желудок.
VI. Спирты	Для дезинфекции поверхностей, изделий медицинского назначения, в качестве кожных антисептиков.	Жидкость
• Спирт этиловый 70°	АМД: бактерии (ТБ-), грибы, вирусы. Для дезинфекции инструментов, кожный антисептик.	Жидкость
• Асептинол	АМД: бактерии (ТБ+). Кожный антисептик: гигиенический и хирургический уровень мытья рук, руки персонала, хирурга; операционное, инъекционное поле.	Жидкость
• Кутасепт Ф	Операционное и инъекционное поле	Жидкость
• Октенисепт	АМД: бактерии (все), хламидии, микоплазмы, дрожжи, вирусы, трихомонады. Хирургический уровень обратов, кожный антисептик. обработка слизистых. Обработка и лечение ран, швов. Нет раздражающего местного эффекта. Нетоксичен	Жидкость
• Дамисепт	Инъекционное поле	Салфетки
• Софтасепт Н	Гигиенический уровень обработки рук; операционного и инъекционного поля	Жидкость
• Сагросепт	АМД: бактерии (все), грибы, вирусы. Гигиенический, хирургический уровень обработки рук. • втирание; • уход за руками и их защита; • профилактика гепатита В; • быстрое наступление бактериологического эффекта — 30 мин, продолжительность до 6 ч; • не нарушает физиологических функций кожи; • нетоксичен	Жидкость
• Октенимар	АМД: бактерии (все), грибы, вирусы. Мягкая дезинфекция рук. Гигиенический уровень обработки рук. • Втирание, бактерицидное действие —через 15 мин, продолжающееся до 6 ч • Обезжиривание • Не нарушает физиологических функций кожи • Отсутствие токсических проявлений и местной непереносимости.	Жидкость	Избегать попадания в глаза

• Октенидерм	АМД: бактерии (все), грибы, вирусы. Гигиенический, хирургический уровень обработки рук медицинского персонала, кожи (инфекционного и операционного полей) • распыление, смазывание тампоном, втирание; • никакого раздражения кожи; • быстрый бактерицидный эффект через 15 мин. Длится до 6 ч; • не нарушает физиологических функций кожи;	Жидкость
• Октенисепт	АМД: бактерии (все), хламидии, микоплазмы, дрожжи и др. Грибы, вирусы, трихомонады. Хирургический уровень обработки рук, антисептическая обработка слизистых. Обработка и лечение ран, швов. • дезинфекция и лечение слизистых; • орошение, смазывание, промывание, втирание; • нет раздражающего местного эффекта; • отсутствие острой и хронической токсичности.	Жидкость
VII. Фенолсодержащие
•Амоцид • Амоцид - 2000	Для дезинфекции поверхностей, сан.-тех. оборудования, белья, выделений. АМД: бактерии, (ТБ+), грибы, вирусы.	Жидкость	3 класс токсичности

Меры предосторожности при работе с дезинфицирующими средствами

1. Используемые для дезинфекции, предстерилизационной обработки и стерилизации химические препараты обладают в различной степени местным и резорбтивным токсическим действием.

2. К работе с дезинфицирующими препаратами допускаются лица, не моложе 18 лет, прошедшие соответствующий инструктаж по обязанностям, технике безопасности, мерам предосторожности и профилактике случайных отравлений, утвержденным соответствующими Правилами.

3. Лица с повышенной чувствительностью к применяемым химическим средствам от работы с ними отстраняются.

4. Замачивание белья, посуды и других предметов в растворах дезинфицирующих средств, предстерилизационную обработку и стерилизацию изделий медицинского назначения химическими средствами, обработку пациентов и их вещей инсектицидами проводят в специальных помещениях, оборудованных приточно-вытяжной вентиляцией.

5. Приготовление рабочих растворов дезинфицирующих средств проводят в хорошо проветриваемых помещениях. Хранят растворы и выдерживают в них обрабатываемые объекты в плотно закрывающихся емкостях. Запасы препаратов хранят в местах, недоступных для общего пользования, в темной посуде, в сухом, темном и прохладном помещении. Все дезинфекционные средства и растворы должны иметь этикетки с указанием названия, концентрации, даты изготовления и срока годности. В отделениях дезинфицирующие средства и их растворы хранят под замком в местах, недоступных для детей и лиц, не занимающихся дезинфекцией, отдельно от лекарственных препаратов.

6. Строго соблюдают последовательность и точно выполняют все этапы очистки и дезинфекции, обеспечивающие максимальное удаление с обрабатываемых объектов остатков моющих и дезинфицирующих средств.

7. Всю работу с дезинфицирующими, стерилизующими химическими средствами и инсектицидами проводят в хорошо проветриваемых помещениях, в спецодежде, перчатках ПХВ, герметичных очках (ПО-2, ПО-3) и в универсальных респираторах (РУ-60М и др.).

(Меры предосторожности при работе с конкретным дезинфицирующим средством указаны в «Методических указаниях» по применению препарата).

8. После окончания работы руки моют и смазывают смягчающим кремом.

9. При проведении дезинфекции необходимо строго соблюдать режимы дезобработок (концентрацию рабочих растворов дезинфицирующих средств, нормы их расхода, время дезинфекционной выдержки) с целью профилактики возможного неблагоприятного воздействия дезинфицирующих средств на организм персонала и пациентов.

Запомните! Способы и средства дезинфекции регламентируются действующими нормативными документами.

Стерилизация.

Стерилизация — метод, обеспечивающий гибель в стерилизуемом материале вегетативных и споровых форм патогенных и непатогенных микроорганизмов. Стерилизации должны подвергаться все предметы или отдельные виды диагностической аппаратуры, соприкасающиеся с раной, кровью, инъекционными препаратами, с поврежденными слизистыми оболочками.

«Стерилизация является важнейшим звеном комплекса неспецифической профилактики ВБИ. Она не имеет специфических особенностей применительно к профилактике конкретных ВБИ, фактором передачи возбудителей которых служат нестерильные изделия медицинского назначения, но во всех случаях стерилизация является последним барьером, защищающим пациента от таких инфекций».

Изделия, подлежащие стерилизации, обрабатывают в несколько этапов: очистка, дезинфекция, предстерилизационная очистка, стерилизация.

В современных лечебных учреждения организованы централизованные стерилизационные отделения (ЦСО), в которых проводят:

• предстерилизационную обработку медицинского инструментария;

• стерилизацию:

а) изделий медицинского назначения;

б) белья и перевязочного материала.

Одна из схем устройства ЦСО представлена на цветной вкладке. В то же время существует и децентрализованная (непосредственно в отделении) система предстерилизационной обработки и стерилизации.

Предстерилизационная очистка, стерилизация.

Цель предстерилизационной обработки — удаление с изделий медицинского назначения белковых, жировых, лекарственных, механических загрязнений, в том числе невидимых (крови, слизи), дезинфицирующих средств, детергентов, что обеспечивает эффективность последующей стерилизации и безопасное использование простерилизованных изделий.

Чтобы повысить эффективность предстерилизационной обработки и стерилизации в ЦСО проводится цветная реакция на следы хлорсодержащих дезинфицирующих средств, свидетельствующих о том, что в отделении, откуда инструменты были доставлены, первичная дезинфекция действительно проводилась. Отрицательная реакция свидетельствует о том, что дезинфекция в отделении не проводилась. В этом случае инструменты возвращают в отделение для первичной дезинфекции. При дезинфекции химическими средствами, не содержащими хлор, эта реакция не проводится.

Предстерилизационную обработку проводят ручным и механическим способом.

При ручной обработке:

1 этап - промывание после дезинфекции проточной водой над раковиной в течении 30 с до полного удаления запаха дезинфицирующего средства;

2 этап - замачивание )полное погружение) изделия в одном из моющих растворов - 15 мин;

• «Биолот» 0,5% — температура 40°С;

• Перекись водорода 0,5% с добавлением 0,5% одного из синтетических моющих средств (CMC): «Прогресс», «Лотос», «Лотос-автомат», «Айна», «Астра»—температура 50°С.

Если моющий раствор, приготовленный из порошка «Биолот», порозовел в процессе использования, пользоваться им не следует, так как эффективность очистки будет низкой.

Запомните! Раствор моющего средства «Биолот» используется однократно!

Раствор, состоящий из перекиси водорода и синтетических моющих средств, можно употреблять в течение суток с момента изготовления, а также подогревать до 6 раз (концентрация перекиси водорода при этом существенно не изменится).

Запомните! Моющий раствор подогревается только перед обработкой изделий медицинского назначения.

Температуру раствора из порошка «Биолот» доводят до 40°С (из других моющих средств до — 50°С), так как при комнатной температуре биологически активные вещества (ферменты) выделяются очень медленно, а при более высокой разрушаются. В последнее время появились новые моющие средства, которые не требуют подогревания и действуют при комнатной температуре:

• Бланизол 1-процентный — 30 мин;

· Век-сайд 0,4-процентный — 30 мин;

· Септадор 0,2-процентный — 30 мин;

Существует группа дезинфицирующих веществ, позволяющих провести дезинфекцию и предстерилизационную очистку одномоментно:

• Лизетол АФ — 30 мин;

• Дюльбак - ДТБ/л — 30 мин;

• Виркон 2-процентный — 10 мин при комнатной температуре;

• Пероксимед 3-процентный — 60 мин при температуре 50°С.

3 этап — мытье каждого изделия в том же растворе, в котором оно замачивалось, с помощью ерша или ватно-марлевого тампона в течение 30 с;

4 этап — ополаскивание проточной водой после использования «Биолота» в течение 3 мин, растворов перекиси водорода в CMC «Прогресс», «Маричка» — 5 мин; CMC «Астра», «Лотос», «Лотос-автомат» — 10 мин;

5 этап — ополаскивание дистиллированной водой в течение 30 с;

6 этап — сушка горячим воздухом при температуре 75-87°С в сушильных шкафах.

Замачивают, моют и ополаскивают изделия в ваннах, раковинах, бачках и других емкостях, которые должны иметь кран (шланг) для струйной подачи воды.

При отсутствии медицинской перекиси водорода надо заменить ее технической марок А и Б. Если нет вообще перекиси водорода, изделия после промывания погружают в 1,5-процентный раствор CMC и кипятят 15 мин, затем ополаскивают проточной водой с одновременным ершеванием в течение 10 мин.

«Биолот», перекись водорода и CMC можно заменить пищевой содой (натрий бикарбонат): после промывания проточной водой изделия погружают в 2-процентный раствор соды и кипятят 15 мин. Ополаскивают проточной водой с одновременным ершеванием в течение 5 мин.

Второй вариант: изделие замачивают в 3-процентном растворе соды 15 мин, моют его 30 с, ополаскивают проточной водой в течение 5 мин.

Перекись водорода вызывает коррозию инструментов, сделанных из коррозионно нестойких металлов. Поэтому в моющий раствор, содержащий перекись водорода и CMC «Лотос», «Лотос-автомат», целесообразно добавлять ингибитор коррозии — 0,14-процентный раствор олеата натрия.

Для механизированной предстерилизационной обработки используют специальные моечные и моечно-дезинфекционные (комбинированные) машины (см. цветную вкладку) для мойки шприцев и игл, хирургических инструментов. Работа моечных машин основана на использовании одного из методов: струйного, ротационного, ершевания, ультразвукового. Методика проведения механизированной обработки зависит от типа используемого оборудования и должна соответствовать инструкции по эксплуатации.

При любом способе предстерилизационной обработки изделий применяют только официально разрешенные в практике здравоохранения средства, обладающие хорошим моющим эффектом при минимальном пенообразовании; хорошей смываемостью при отсутствии пирогенности и токсичности и коррозионного действия.

Металлические инструменты в результате эксплуатации, дезинфекции, предстерилизационной обработки, стерилизации могут иметь коррозионные повреждения, в этом случае они подвергаются предстерилизационной обработке с помощью специальных средств.

Контроль качества предстерилизационной обработки

Качество предстерилизационной обработки контролируют путем проб: на наличие крови — с помощью азопирамовой и амидопириновой; масляных лекарственных загрязнений на шприцах и других изделиях — проба с Суданом III щелочных компонентов моющих средств — фенолфталеиновой пробой.

Азопирамовая проба. Готовят 1-1,5-процентный раствор солянокислого анилина в 95-процентном этиловом спирте. Он может храниться в плотно закрытом флаконе при 4°С (в холодильнике) 2 месяца, а в темноте при комнатной температуре (18-23°С) — не более 1 месяца. Умеренное пожелтение реактива в процессе хранения без выделения осадка не снижает его рабочих качеств.

Непосредственно перед пробой готовят раствор: смешивают в равных количествах азопирам и 3-процентную перекись водорода.

Запомните! Рабочий раствор азопирама должен быть использован в течение 1-2 ч, иначе может появиться спонтанное розовое окрашивание. При температуре 25°С раствор розовеет быстрее, поэтому его используют в течение 30-40 мин.

Нельзя подвергать проверке горячие инструменты, а также держать раствор при ярком свете, повышенной температуре (вблизи нагревательных приборов и т. п.).

Амидопириновая проба. Готовят спиртовой 5-процентный раствор амидопирина в 95-процентном этиловом спирте, который может храниться во флаконах с притертой пробкой в холодильнике в течение 1 месяца.

30-процентный раствор уксусной кислоты и 3-процентной перекиси водорода готовят на дистиллированной воде. Смешивают равные количества 5-процентного спиртового раствора амидопирина, 30-процентной уксусной кислоты и 3-процентной перекиси водорода перед употреблением.

Проба с азопирамом по чувствительности не уступает отмененной бензидиновой пробе и в 10 раз превосходит амидопириновую.

Запомните! При азопирамовой пробе фиолетовое окрашивание в течение нескольких секунд переходит в розово-сиреневое или буроватое.

Проба с Суданом III. В 70 мл нагретого до 60°С (на водяной бане) 95-процентного этилового спирта растворяют по 0,2 г измельченной краски Судана III и метиленового синего. Затем добавляют 10 мл раствора аммиака 20-25-процентного и 20 мл дистиллированной воды. Данный раствор хранят в плотно закрытом флаконе (в холодильнике) 6 месяцев.

Фенолфталеиновая проба. Готовят спиртовой раствор 1-процентного фенолфталеина, который хранится во флаконе с притертой пробкой в холодильнике в течение 1 месяца.

При положительной пробе на кровь, жировое загрязнение или моющее средство всю группу контролируемых изделий подвергают повторной очистке (до получения отрицательных результатов). Контролю подвергают 1% каждого наименования изделий, обработанных за сутки, а в ЦСО — за 1 смену.

Методы, средства и режимы стерилизации

Стерилизация изделий медицинского назначения должна обеспечить гибель микроорганизмов всех видов на всех стадиях развития. Поскольку к преобладающему большинству средств стерилизации (за исключением ионизирующего излучения) наибольшую устойчивость проявляют споры микроорганизмов, то стерилизующими являются средства, оказывающие спороцидное действие.

Используются следующие методы стерилизации:

термические: паровой, воздушный, глассперленовый;

химические: газовый, химические препараты;

радиационный,

плазменный и озоновый (группа химических средств).

Выбор того или иного метода стерилизации конкретных изделий зависит от особенностей изделия и самого метода — его достоинств и недостатков.

Изделия в упаковке стерилизуют при децентрализованной, централизованной системах, или на промышленных предприятиях, выпускающих изделия медицинского назначения однократного применения. Изделия без упаковки стерилизуют только при децентрализованной системе в ЛПУ.

Самые распространенные в ЛПУ — паровой и воздушный методы стерилизации.

Паровой метод — надежный, нетоксичный, недорогой, обеспечивающий стерильность не только поверхности, но и всего изделия. Он осуществляется при сравнительно невысокой температуре, обладает щадящим действием на обрабатываемый материал, позволяет стерилизовать изделия в упаковке, благодаря чему предупреждается опасность реконтаминации (повторного обсеменения микроорганизмами).

Стерилизующий агент при этом методе — водяной насыщенный пар под избыточным давлением.

Стерилизацию проводят при следующих режимах:

• 141 ± ГС под давлением 2,8 Бар — 3 мин;

• 134 ± ГС под давлением 2,026 Бар — 5 мин;

• 126 ± ГС под давлением 1,036 Бар— 10 мин.

Паровым методом стерилизуют изделия из коррозионностойких металлов, стекла, текстильных материалов, резины, латекса.

В качестве упаковки используют стерилизационные коробки (биксы), пергамент, оберточные бумаги: мешочную непропитанную, мешочную влагопрочную, упаковочную высокопрочную, двухслойную крепированную.

Чтобы пар хорошо проникал в различные точки стерилизационной камеры, между изделиями и внутрь изделий из текстиля, очень важно соблюдать нормы загрузок как стерилизатора, так и бикса.

Срок хранения стерильного материала зависит от вида упаковки.

Паровой метод имеет и существенные недостатки, вызывает коррозию инструментов из некоррозионностойких металлов: превращаясь в конденсат, увлажняет

стерилизуемые изделия, что ухудшает условия их хранения, увеличивает опасность реконтаминации.

Воздушный метод. Стерилизующим агентом является сухой горячий воздух. Отличительная особенность метода— не происходит увлажнения упаковки и изделий, и связанного с этим уменьшения срока стерильности, а также коррозии металлов.

Недостатки метода:

• медленное и неравномерное прогревание стерилизуемых изделий;

• необходимость использования более высоких температур;

• невозможность использовать для стерилизации изделий из резины, полимеров;

• невозможность использовать все имеющиеся упаковочные материалы.

Воздушный метод проводят в воздушных стерилизаторах при следующих режимах:

• 200 ± 3°С — 30 мин;

• 180 + 3°С — 40 мин;

• 160 + 3°С — 120 мин.

Эффективность воздушной стерилизации во многом зависит от равномерного проникновения горячего воздуха к стерилизуемым изделиям, что достигается принудительной циркуляцией воздуха со скоростью 1 м/с и соблюдением норм загрузки стерилизатора.

И паровой, и воздушный методы стерилизации экологически чистые.

Газовый метод осуществляется при 18-80°С. Изделия стерилизуются в упаковках.

При газовой стерилизации используют этилен-оксид и его смеси, формальдегид.

В газообразном состоянии этилен-оксид не вызывает коррозии металлов, не портит изделий из кожи, шерсти, бумаги, пластмасс; он является сильным бактерицидным, спороцидным и вирулицидным средством. Пары обладают высоким проникновением.

Недостаток этилен-оксида — его токсичность для персонала и взрывоопасность при несоблюдении техники безопасности. Процесс стерилизации имеет продолжительный цикл. Этилен-оксид редко используется в ЛПУ.

Формальдегид по своим качествам не уступает, а по некоторым показателям превосходит этилен-оксид. Для стерилизации, как правило, используются пары 40-процентного спиртового раствора формальдегида. Стерилизующим агентом может быть формальдегид, испаряющийся из параформа или формалина.

Стерилизация растворами — вспомогательный метод, который применяют при невозможности использования других. Стерилизация растворами имеет следующие недостатки, изделия стерилизуются без упаковки, их необходимо промывать после стерилизации, что может привести к реконтаминации.

Преимущества: повсеместная доступность, легкость в исполнении и др.

Стерилизуемые растворами изделия свободно раскладывают в емкости. При большой длине изделие укладывают по спирали, каналы и полости заполняют раствором.

После окончания стерилизации изделия трижды (при стерилизации перекисью водорода — дважды) погружают на 5 мин в стерильную воду, каждый раз меняя ее, затем стерильным корнцангом их переносят в стерильную емкость, выложенную стерильной простыней.

Поскольку изделия стерилизуют растворами без упаковки, этот метод может быть использован только при децентрализованной системе.

Радиационный метод необходим для стерилизации изделий из термолабильных материалов. Стерилизующим агентом являются ионизирующие у (гамма)- и 3 (бета)-излучения.

Для индивидуальной упаковки, помимо бумажных используют пакеты из полиэтилена. Сохраняется стерильность в такой упаковке годами, но и он ограничен. Срок годности указывается на упаковке.

Радиационный — основной метод промышленной стерилизации. Он используется предприятиями, выпускающими стерильные изделия однократного применения.

Контроль качества стерилизации.

Контроль позволяет улучшить качество стерилизации в ЛПУ. Он предусматривает определение эффективности и параметров стерилизации.

Надежность воздушной стерилизации зависит от конструкции стерилизатора, его исправности, схемы и объема загрузки, используемой защитной упаковки, применяемых методов оперативного и периодического контроля, подготовки персонала, обсуживающего стерилизатор.

Проблема надежности особенно актуальна при эксплуатации аппаратов устаревших типов, при отсутствии доступных методов контроля стерилизации.

Контроль эффективности стерилизации в воздушном стерилизаторе осуществляется бактериологическим методом и химическими термовременными индикаторами.

Бактериологический метод контроля проводят с помощью биотеста — объекта из определенного материала, обсемененного тест-микроорганизмами. В качестве носителей используют небольшой флакон, содержащий споры B.Licheniformis. Контроль проводят в соответствии с утвержденной методикой. Существуют и готовые сертифицированные тесты со спорами B.Licheniformis с цветными питательными средами, позволяющими провести бактериологический контроль непосредственно в ЦСО при наличии в нем термостата.

Контроль воздушной стерилизации химическими термовременными индикаторами. Для оперативного контроля ранее рекомендовали многочисленные химические вещества, точка плавления которых соответствует температуре стерилизации. Но на сегодняшний день всем ясно, что они не могут считаться надежными индикаторами, поскольку не дают представления о времени воздействия горячего воздуха на изделие. Такой контроль носит ориентировочный характер и не гарантирует достижения стерильности в процессе стерилизации.

Надежность оперативного контроля существенно повышается при использовании индикаторов интегрированного действия, в частности, НП фирмы «Винар» ИС-160 и ИС-180, изменяющая окраску до цвета эталона только при воздействии на них температуры стерилизации в течение всей стерилизационной выдержки. Полоски индикатора закладываются в контрольные точки стерилизатора при каждом цикле стерилизации. Если окраска индикатора после стерилизации в какой-либо точке светлее эталона, все изделия считаются нестерильными.

Пакеты из пергаментной бумаги, используемые для упаковки, при стерилизации в современной стерилизующей аппаратуре имеют подобный индикатор, нанесенный в фабричных условиях.

— Надежность паровой стерилизации зависит от нескольких факторов:

• соблюдения условий эксплуатации;

• точности контрольно-измерительных приборов, установленных на стерилизаторе;

• полноты удаления воздуха из стерилизуемых изделий;

• герметичности камеры стерилизатора.

Методы периодического контроля паровых стерилизаторов изложены в системе «чистый инструмент». Они включают:

• проверку точности манометра;

• проверку точности регистрации самописцами температуры и давления;

• контроль герметичности камеры стерилизатора;

• контроль качества автоматического вакуум-теста;

• контроль эффективности сушки текстильных материалов;

• проверку полноты удаления воздуха из стерилизуемых изделий.

Определение эффективности бактериологическим методом в паровом стерилизаторе осуществляется тестами, содержащими споры B.Stearothermophilus в соответствии с методикой, утвержденной МЗ РФ.

Оперативный контроль паровой стерилизации проводят химическими индикаторами интегрированного действия (термо-временными).

Индикаторы плавления (тиомочевина, бензойная кислота и др.), которые все еще используются в некоторыхЛПУ, не являются индикаторами стерильности, поскольку регистрируют только температуру, но не учитывают стерилизационную выдержку (время стерилизации). Индикаторы фирмы «Винар» ИС-120 и ИС-132, также, как и в воздушном стерилизаторе, изменяют окраску до учета эталона только при воздействии на них температуры стерилизации в течение всей стерилизационной выдержки.

При каждом цикле полоски индикатора закладываются в контрольные точки стерилизатора. Если окраска индикатора в какой-нибудь точке светлее эталона, все изделия считаются нестерильными.

1.3. Контроль за распространением инфекции

Взятие для бактериологического исследования мочи, мокроты, содержимого зева, носа, носоглотки, и взятие кала — для паразитологического исследования.

Бактериологическое и паразитологическое исследования проводятся для диагностики и осуществления контроля над распространением инфекции.

Емкости для проб получают накануне в бактериологической (паразитологической) лаборатории.

Подготовка к взятию пробы биологического материала для бактериологического и паразитологического исследования

• Материал для исследований нужно брать до начала антибактериальной терапии или через 8-10 ч после введения последней дозы антибактериального препарата.

• Чтобы избежать загрязнения пробы микрофлорой окружающей среды, необходимо соблюдать строжайшую асептику.

• Использовать:

а) ватные тампоны для взятия биологического материала из раны, со слизистых оболочек (глаз, зева, носа);

б) проволочную петлю для взятия биологического материала из влагалища, анального отверстия;

в) стерильную посуду для непосредственного сбора мочи, мокроты, кала.

• Количество материала должно быть достаточным для исследования и при необходимости — для его повторения.

• Соблюдать требования транспортировки:

а) транспортировку полученного биологического материала в лабораторию производят в максимально короткие сроки;

б) если материал нельзя немедленно транспортировать в лабораторию, его следует хранить в холодильнике, или в специальных транспортных средах, когда транспортировка длится более 24 ч, а также когда микроорганизмы погибают почти сразу после взятия;

в) биологический материал для культивирования строгих анаэробов транспортировать в специальных флаконах, заполненных газом;

г) материал для бактериологического исследования транспортировать в специальных жестких емкостях (бикс и т.п.)

• К клиническому образцу необходимо приложить сопроводительный документ, содержащий следующие сведения:

характер (вид) материала;

ФИО пациента;

возраст пациента;

название лечебного учреждения или его отделения;

номер медицинской карты стационарного больного;

предполагаемый диагноз;

результаты предыдущих микробиологических исследований;

предшествующая антибактериальная терапия;

дата и время взятия материала;

цель исследования;

ФИО врача, направляющего материал для исследования.

Обучение пациента (пациентки) технике сбора мочи для бактериологического исследования.

Оснащение: стерильная емкость, бумажное полотенце, салфетки.

I. Подготовка к процедуре.

1. Уточнить у пациента понимание цели предстоящего исследования и получить его согласие (информированное согласие на процедуру получает врач). В случае неинформированности пациента — уточнить у врача дальнейшую тактику.

2. Объяснить пациенту цель предстоящей подготовки к исследованию и ее последовательность.

3. А. Подготовка женщины (рис. 1.10)

Рис. 1.10. Подготовка и взятие мочи для микробиологического исследования у женщин.

• Утром накануне процедуры приготовить теплую кипяченную воду и мыло для подмывания.

• Зайти в туалетную комнату и раздеться ниже пояса.

• Вымыть руки.

• Расстелить бумажное полотенце, положить на него бумажные салфетки и поставить закрытый сосуд для сбора мочи.

• Сесть как можно ближе к спинке унитаза и развести ноги. Пальцами раздвинуть половые губы и держать их раздвинутыми до окончания процедуры.

• Подмыться тщательно кипяченой водой с мылом, проводя рукой в направлении спереди назад.

• Осушить (по очереди) правую и левую половые губы и наружное отверстие мочеиспускательного канала, используя три салфетки.

• Выбросить салфетки в унитаз.

3. Б. Подготовка мужчины (рис. 1.11).

Рис. 1.11. Подготовка и взятие мочи для микробиологического

исследования у мужчин.

• Приготовить теплую кипяченую воду и мыло для подмывания.

• Расстелить в туалетной комнате бумажное полотенце, положить на него бумажные салфетки и поставить закрытый сосуд для сбора мочи.

• Вымыть руки.

• Взять половой член, как при мочеиспускании, освободить головку, отодвинуть крайнюю плоть и вымыть ее водой с мылом.

• Высушить головку полового члена, используя три салфетки; выбрасывать салфетки в унитаз сразу же после однократного промокания.

II. Выполнение процедуры.

4. Взять емкость для сбора мочи, открыть крышку, не прикасаясь к внутренней поверхности емкости и крышки; положить крышку на бумажное полотенце внутренней поверхностью вверх.

5. Выпустить немного мочи в унитаз и задержать мочеиспускание.

6. Подставить сосуд для мочи, не касаясь им гениталий и ануса (головки полового члена).

7. Собрать в сосуд 3-5 мл мочи и задержать мочеиспускание.

Закрыть емкость с мочой крышкой, не касаясь ее внутренней поверхности, и закончить мочеиспускание в унитаз.

8. Вымыть руки. Одеться.

III. Завершение процедуры.

9. Отнести в контейнере сосуд с мочой и направление в лабораторию (в амбулаторных условиях. В условиях стационара — отдать медсестре).

Примечание: Если невозможно доставить емкость с мочой в лабораторию немедленно, следует поместить ее в специальный (в условиях ЛПУ) холодильник, где хранить при температуре 4° С не более 24 ч.

Взятие кала для бактериологического исследования (рис. 1.12)

а б в г

Рис. 1.12. Взятие кала для бактериологического исследования.

Оснащение: стерильная пробирка с консервантом и ректальной петлей, шпатель, перчатки, стеклограф.

I. Подготовка к процедуре

1. Уточнить у пациента понимание цели и хода предстоящей процедуры и его согласие (информированное согласие на процедуру получает врач).

II. Выполнение процедуры

2. Надеть перчатки.

З.А. В амбулаторных условиях:

• Помочь пациенту лечь на правый бок спиной к вам, попросить его прижать колени к животу.

• Извлечь ректальную петлю из пробирки, удерживая ее только за пробку (пробирка остается в штативе).

• Другой рукой раздвинуть ягодицы и бережно ввести петлю в анальное отверстие.

• Взять материал со стенок прямой кишки легкими круговыми движениями.

• Извлечь петлю из анального отверстия и, не касаясь наружной поверхности пробирки, опустить петлю в пробирку.

З.Б. Способ, допустимый в условиях стационара.

• Обеспечить пациента продезинфицированным и промытым после дезинфицирующего раствора судном.

• После дефекации извлечь ректальную петлю из пробирки, удерживая ее только за пробку,

• Петлей взять из судна 3-5 г фекалий и, не касаясь наружной поверхности пробирки, опустить петлю в пробирку

или

• деревянным шпателем взять 3-5 г фекалий и поместить их в стерильную стеклянную емкость.

III. Завершение процедуры.

4. Снять перчатки, вымыть руки.

5.Заполнить бланк для направления пробы в лабораторию. Написать на пробирке номер, соответствующий номеру, указанному в направлении.

6. Доставить пробу и направление в лабораторию (пробирка с петлей в штативе, штатив — в контейнере).

Обучение пациента подготовке и взятию мокроты для бактериологического исследования (рис. 1.13)

Рис. 1.13. Взятие мокроты для бактериологического исследования.

Оснащение: стерильная емкость для пробы.

I. Подготовка к взятию пробы.

1. Уточнить у пациента понимание цели предстоящего исследования и его согласие на процедуру.

II. Выполнение процедуры.

2. Обучить пациента подготовке и взятию пробы.

• Почистить зубы и прополоскать рот кипяченой водой. Взять пробу на исследование: При позыве на кашель:

а) снять крышку со стерильной емкости (полученной от медсестры), не касаясь ее внутренней поверхности;

б) поднести ко рту открытую емкость (не прикасаясь к ней губами) и откашлять в нее мокроту;

в) закрыть емкость крышкой и передать ее медсестре.

III. Завершение процедуры.

3. Убедиться в эффективности обучения: попросить пациента повторить информацию.

4. Доставить емкость с мокротой в контейнере в лабораторию с сопроводительными документами, соблюдая общие меры предосторожности.

Примечание: при невозможности немедленной доставки мокроты в лабораторию, ее можно хранить в специальном холодильнике не более 1-2 ч при температуре 4°С.

Взятие содержимого зева для бактериологического исследования (рис. 1.14)

Оснащение: стерильная пробирка с влажным ватным тампоном, штатив, шпатель, емкость для использованного материала, стеклограф.

Рис. 1.14.

I. Подготовка к процедуре

1. Уточнить у пациента понимание цели и хода предстоящего исследования и его согласие на процедуру.

2. Вымыть руки. Надеть маску и перчатки.

II. Выполнение процедуры

3. Сесть напротив пациента.

4. Извлечь тампон из пробирки, придерживая его за пробку (пробирка остается в штативе).

5. Взять шпатель в другую руку; попросить пациента слегка запрокинуть голову и открыть рот; надавить шпателем на корень языка.

6. Не касаясь тампоном слизистой оболочки полости рта и языка, провести тампоном по дужкам и небным миндалинам (при подозрении на дифтерию — на границе
измененной и неизмененной ткани миндалин).

Примечание: рекомендуется сначала провести тампоном по правой миндалине, затем — небной дужке, язычку, левой небной дужке, левой миндалине, задней стенке глотки.

При ясно локализованных очагах материал берется двумя тампонами (в две пробирки): из очага и всех участков.

III. Завершение процедуры.

7. Извлечь тампон из полости рта, выбросить шпатель в специальную емкость, ввести тампон в пробирку, не касаясь ее наружной поверхности.

8. Снять перчатки, маску, вымыть руки.

9. Заполнить бланк для направления пробы в лабораторию. Написать на пробирке номер, соответствующий номеру, указанному в направлении. Доставить пробу в лабораторию в контейнере.

Взятие содержимого носа для бактериологического исследования (рис. 1.15)

Рис. 1.15.

Оснащение: стерильная пробирка с сухим ватным тампоном, штатив, перчатки, стеклограф.

I. Подготовка к процедуре.

1. Уточнить у пациента понимание цели и хода предстоящего исследования и его согласие на процедуру.

2. Вымыть руки. Надеть маску и перчатки.

II. Выполнение процедуры.

3. Сесть напротив пациента.

4. Извлечь тампон из пробирки, придерживая его за пробку (пробирка остается в штативе).

5. Свободной рукой приподнять кончик носа пациента, другой рукой ввести тампон вглубь левой, затем правой полости носа.

III. Завершение процедуры.

6. Извлечь тампон из носа и ввести его в пробирку, не касаясь ее наружной поверхности.

7. Снять перчатки, маску, вымыть и высушить руки.

8. Заполнить бланк для направления пробы в лабораторию. Написать на пробирке номер, соответствующий номеру, указанному в направлении. Доставить пробу в лабораторию в контейнере.

Взятие содержимого носоглотки для бактериологического исследования (рис. 1.16)

Рис. 1.16.

Оснащение: стерильная пробирка с сухим тампоном, шпатель, штатив, перчатки, стеклограф.

I. Подготовка к процедуре

1. Уточнить у пациента понимание цели и хода предстоящего исследования и его согласие на процедуру.

2. Вымыть руки. Надеть маску и перчатки.

II. Выполнение процедуры.

3. Сесть напротив пациента.

4. Извлечь тампон из пробирки, придерживая его за пробку (если тампон не изогнут, извлекая, изогните о внутреннюю стенку пробирки). Пробирка остается в штативе.

5. Взять шпатель в свободную руку. Попросить пациента слегка запрокинуть голову и открыть рот. Надавить шпателем на корень языка.

6. Осторожно, не касаясь тампоном слизистой оболочки полости рта и языка, ввести тампон в носоглотку и провести им по слизистой оболочке.

III. Завершение процедуры.

7. Извлечь тампон из носоглотки, выбросить шпатель в специальную емкость, ввести тампон в пробирку, не касаясь ее наружной поверхности.

8. Снять перчатки, маску, вымыть руки.

Учтите! За время транспортировки в лабораторию, расположенную даже в том же здании, эта капля успевает остыть, а иногда и высохнуть. Поэтому исследование должно быть проведено в том же помещении, что и эндоскопия.

Сбор кала для обнаружения в нем простейших связан с определенными трудностями.

Следует помнить, что большинство этих одноклеточных организмов встречается в двух формах: вегетативной — активной, подвижной, жизнедеятельной, легко поддающейся вредным воздействиям (в т. ч. охлаждению) и потому быстро погибающей после выделения из кишечника и в виде устойчивых к внешним воздействиям цист. При неблагоприятных условиях для их жизнедеятельности (например, уплотнение каловых масс) они превращаются в цисты. В оформленном кале простейшие, как правило, встречаются лишь в форме цист.

Кал для отыскания в нем вегетативных форм должен исследоваться сразу же после его выделения, еще в теплом состоянии. Во-первых, в остывшем кале вегетативные формы простейших быстро гибнут и мертвыми поддаются действию протеолитических ферментов, в результате чего вначале теряют свою структуру, а затем и совсем растворяются.

Во-вторых, при остывании уменьшается, а затем исчезает подвижность простейших— важный вспомогательный фактор при их дифференцировании в лаборатории.

Сохранять кал в термостате не допускается, так как в условиях искусственного подогревания простейшие разрушаются и в последующем не распознаются.

При взятии пробы кала даже при условии своевременного (быстрого, до остывания) исследования нужно учитывать, что в оформленном кале можно обнаружить только цисты, а для обнаружения вегетативных форм следует брать комки слизи, находящейся на поверхности оформленного кала.

Для получения достоверных результатов исследования при обнаружении простейших следует учесть, что:

• жидкие каловые массы исследуют не более чем через 30 мин после дефекации, а оформленные — не более чем через 2 ч после дефекации;

• в фекалиях не должно быть посторонних примесей — воды, мочи и т. д.;

• для сбора кусочков кала пригодны только деревянные палочки (шпатели), так как со стеклянных кусочки слизи, в которых часто находятся паразиты, соскальзывают;

• деревянные палочки сжигают после одноразового использования;

• емкость для пробы должна быть стерильной;

• взятие, хранение и транспортировку пробы проводят с учетом всех необходимых мер инфекционной безопасности.

Пациент должен быть информирован, что выделение простейших с калом происходит непостоянно, поэтому, возможно, однократного исследования недостаточно и его нужно повторять 4-5 раз с интервалом 2-3 дня.

Иногда для обнаружения простейших, особенно амеб, используют материал, полученный при ректороманоскопии. В этих случаях нужно помнить о необходимости правильного обращения с полученным незначительным количеством материала.

Смазывание ректоскопа вазелиновым маслом или глицерином делают последующее исследование затруднительным.

На территории Российской Федерации выделено большое количество видов червей, паразитирующих в кишечнике человека. Заболевания, вызываемые этими червями, называются гельминтозы. Исследование кала позволяет определить вид гельминтоза.

Чаще всего сестринский персонал обучает пациента методике сбора фекалий в домашних условиях.

Пациент должен знать о том, что:

• для сбора фекалий следует приготовить чистую сухую стеклянную емкость с крышкой и деревянный шпатель;

• фекалии для исследования собирают из утренней порции свежевыпущенного кала;

• в кале не должно быть примесей воды и мочи. Шпателем в банку кладут 30-50 г кала, взятого из разных мест непосредственно после дефекации, и плотно закрывают ее крышкой. Шпатель следует сжечь.

Запомните! В лабораторию нельзя доставлять кал после клизмы, введения свечей, приема внутрь красящих веществ, касторового и вазелинового масла, белладонны, железа, висмута, бария.

Существует несколько методов получения материала для исследования такого гельминтоза как энтеробиоз (его вызывают острицы) (см. Приложение № 2 к Приказу МЗ СССР от 13.04.86 г. № 1089):

Обнаружение яиц остриц в перианальном соскобе с применением деревянного шпателя.

Соскоб можно делать вечером перед сном или утром после дефекации (у женщин и до мочеиспускания). Деревянным шпателем (или спичкой с намотанным на нее тонким слоем ваты), смоченным предварительно в 50-процентном растворе глицерина или 1-процентном растворе двууглекислого натрия, осторожно производят соскабливание с поверхности анальных складок.

Полученный материал тщательно соскабливают со шпателя (спички) краем предметного стекла непосредственно на другое предметное стекло в каплю 50-процентного раствора глицерина (рис. 1.17) и проводят микроскопирование. Шпатель сжигают.

Этот метод удобен при взятии соскоба непосредственно в лаборатории.

Рис. 1.17

Обнаружение яиц остриц в перианальных складках с использованием липкой ленты.

Полоску липкой ленты длиной 10 см и шириной 2 см захватывают пинцетом с одной стороны и наклеивают на перианальную область. Лента должна быть прижата к коже полностью, для чего ее приглаживают металлической или деревянной палочкой. Затем ленту отклеивают и переносят на предметное стекло. Между стеклом и полоской не должно быть пузырьков воздуха. В лаборатории препарат микроскопируют. Допускается сохранение материала в холодильнике, если его невозможно исследовать в этот же день.

Следует отметить, что использование для получения материала бесцветных полиэтиленовых и поливинилхлоридных лент с липким слоем для изоляции и других бытовых целей нежелательно, поскольку токсикологические свойства этих лент не изучено. Можно пользоваться лентами, нарезанными из безвредной нетоксичной липкой операционной пленки (ЛПО-1, ЛПО-2).

Обнаружение яиц остриц в содержимом подногтевых пространств.

В подногтевые пространства яйца остриц могут попадать при расчесывании перианальных складок в ночное время.

Пробу из подногтевых пространств берут спичкой, отточенной в виде шпателя и смоченной в смеси из равных частей 50-процентного раствора глицерина и раствора Люголя.

Полученный материал тщательно счищают со спички краем предметного стекла непосредственно на другое предметное стекло в каплю раствора глицерина и проводят микроскопирование. Спичку сжигают.

Этот метод проводят непосредственно в лаборатории.

Взятие любого биологического материала для бактериологического и паразитологического исследования осуществляют с соблюдением всех мер предосторожности, препятствующих распространению ВБИ.